BBL Haemophilus Test Medium Agar L Rev. 06 Şubat 2007 KALİTE KONTROL PROSEDÜRLERİ

Transkript

1 I GİRİŞ BBL Haemophilus Test Medium Agar Rev. 06 Şubat 2007 KALİTE KONTROL PROSEDÜRLERİ Haemophilus Test Medium Agar, Haemophilus türleri için antimikrobiyal disk difüzyon duyarlılık prosedüründe kullanım amaçlıdır. II PERFORMANS TEST PROSEDÜRÜ 1. Aşağıda listelenen kültürler ile temsili örnekleri inoküle edin. a. İnokülum hazırlanması. Mueller Hinton Broth veya Mueller Hinton II Broth içerisinde bir organizma süspansiyonu hazırlayın. Süspansiyonu 625 nm de 0,1 absorbans birimine ayarlayın. Bu süspansiyon yaklaşık olarak 1 ila 4 x 10 8 CFU/mL içerecektir. b. İnokülumun türbiditesini ayarladıktan sonra 15 dakika içerisinde, broth süspansiyonuna steril bir swab batırın. Swabdan fazla inokülumu gidermek için swabı birkaç defa tüpün iç duvarında sıvı seviyesinin üzerinde çevirin. c. Swabı plak yüzeyine sürerek plak yüzeyini inoküle edin. Plağı her defasında 60 derece çevirerek bu prosedürü iki kez veya daha fazla tekrar edin. d. Plağın kapağını çıkarın ve Sensi-Disc antimikrobiyal duyarlılık test disklerini uygulamadan önce inokülumun en az 3 dakika, ancak 15 dakikadan kısa süre absorbe olmasını bekleyin. e. 100 mm lik petri kutusu için 6 lı veya 8 li Sensi-Disc Dispenser ve 150 mm lik petri kutusu için 12 li Sensi-Disc Designer Dispenser System kullanarak, ilgili kültürlere uygun diskleri yerleştirin. Aşağıdakilerden en fazla altı tanesini içerecek şekilde, tek bir 100 mm lik plağa en fazla dört antimikrobiyal disk ve 150 mm lik plağa en fazla dokuz antimikrobiyal disk koyulmalıdır: üçüncü kuşak sefalosporinler, aztreonam, imipenem veya siprofloksasin. f. Diskler uygulandıktan sonra 15 dakika içerisinde, plakları ters çevirin ve %5 karbondioksit ile zenginleştirilmiş aerobik atmosferde 35 ± 2 C de inkübe edin saat sonra plakları inceleyin ve en yakın mm ye yuvarlayarak tam inhibisyon zonlarının zon çaplarını ölçün. Son nokta, belirgin görünür gelişim göstermeyen alan olarak alınmalıdır; inhibisyon zonunun kenarında zorlukla saptanan küçük kolonilerin zayıf gelişimini göz ardı edin. Trimetoprim ve sülfonamidler ile, zayıf gelişimleri (gelişimin %20 veya daha azı) göz ardı edin ve zon çapını belirlemek için daha belirgin olan sınırı ölçün. 3. Beklenen Sonuçlar a. Test Organizmaları: *Haemophilus influenzae ATCC *Haemophilus influenzae ATCC Haemophilus influenzae ATCC (Gelişim destekleyici özelliklerin doğrulanması için). b. Zon boyutları, H. influenzae için Clinical and Laboratory Standards Institute (eski adı NCCLS) tarafından belirlenen kabul edilebilir zon çapı kalite kontrol sınırları aralığı içerisinde olmalıdır. Bu sınırlar, CLSI Document M2-A9, Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests, 9th ed.; Approved Standard a dahil edilen CLSI Document M100-S17 (M2) de yayınlanmıştır. 1 Antimikrobiyal disklerin revize edilmiş tablolarını ve yorumlama standartlarını içeren ek tablolar periyodik olarak yayınlanmaktadır. Güncel öneriler için son tablolara bakılmalıdır. Daha fazla bilgi için ÜRÜN BİLGİLERİ bölümündeki SONUÇLAR kısmındaki kutuya bakın. c. H. influenzae ATCC gelişimi orta ila yoğun olmalıdır. *Kullanıcı Tarafından Kalite Kontrolü için tavsiye edilen organizma. III EK KALİTE KONTROLÜ 1. Plakları Ürünün Bozulması konusunda tanımlanan şekilde inceleyin. 2. Mevcut olan herhangi bir fiziksel bozukluğun kullanımı etkilemeyeceğinden emin olmak için temsili plakları görsel olarak inceleyin. 3. ph yı oda sıcaklığında potansiyometrik olarak belirleyerek 7,3 ± 0,1 spesifikasyonuna uymasını sağlayın. 4. İnokülasyon prosedürü sırasında plakların sağlamlığına dikkat edin. 5. İnoküle edilmiş temsili plakları 35 ± 2 C de 72 saat boyunca inkübe edin ve mikrobiyal kontaminasyon açısından inceleyin. 1

2 ÜRÜN BİLGİLERİ IV KULLANIM AMACI Haemophilus Test Medium Agar (HTM Agar), Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) tarafından yayınlanan Approved Standard M2-A9 da tanımlandığı şekliyle Haemophilus spp. için antimikrobiyal disk difüzyon duyarlılık prosedüründe kullanım amaçlıdır. 1 V ÖZET VE AÇIKLAMA 1966 da, Bauer, Kirby ve diğerleri, yaygın, hızlı gelişen bakterilerin antimikrobiyal duyarlılık testi için Mueller Hinton Agar ın test besiyeri olarak seçildiği standardize bir prosedür geliştirmiştir. 2-4 Bu besiyeri bazı streptokok, gonokok ve Haemophilus türleri gibi güç gelişen organizmalar için yeterli değildir. %1 hemoglobin ve %1 IsoVitaleX Enrichment (Mueller Hinton Chocolate Agar) ile zenginleştirilmiş Mueller Hinton Agar daha önce Haemophilus influenzae için önerilen besiyeri olarak kullanılmıştır. 5 Jorgensen ve arkadaşları tarafından Haemophilus Test Medium (HTM) nin geliştirilmesini sağlayan kapsamlı çalışmalar gerçekleştirilmiştir. 6,7 Bu besiyeri X faktörü (hemin veya hematin), V faktörü (nikotinamid adenin dinükleotid, NAD) ve maya ekstraktı ile zenginleştirilmiş Mueller Hinton agardır. HTM Agar ın Mueller Hinton Chocolate Agar a kıyasla en önemli avantajı, Mueller Hinton Agar da güç üremeyen organizmalar için standart test prosedürü olan, petri kutusunun tabanından zon çapının ölçülmesine izin veren optik netliktir. Ayrıca, HTM Agar az miktarda timidin içerir ve bu sebeple trimetoprim/sülfametoksazol testi için uygundur. Haemophilus un antimikrobiyal duyarlılık testi için yorumlama kriterleri, CLSI document M2-A9 deki 1 CLSI document M100-S17 (M2) de 8 sunulmuştur. Daha fazla ayrıntı için bu belgeye bakılmalıdır. VI PROSEDÜR İLKELERİ Bauer-Kirby prosedürü, kağıt disklere aşılanan antimikrobiyal maddelerin agar jeli içerisinde difüzyonunu temel alır. Yüksek ve düşük antimikrobiyal konsantrasyonlarda disklerin kullanıldığı ve bunların yorumlanması için inhibisyon zonlarının varlığı veya yokluğunun kullanıldığı daha eski yöntemlerden farklı olarak bu yöntem antimikrobiyal ajanın tek bir konsantrasyonunu içeren diskler kullanır ve zon çapları minimum inhibitör konsantrasyonlar (MIC) ile ilişkilidir. 1-3,9 Test prosedürüne göre, organizmanın standardize edilmiş bir süspansiyonu besiyerinin tüm yüzeyine sürülür. Ardından, belirli miktarda antibiyotik veya diğer antimikrobiyal ajanlar ile aşılanmış kağıt diskler besiyeri yüzeyine yerleştirilir, plak inkübe edilir ve her bir disk etrafındaki inhibisyon zonları ölçülür. Organizmaların ajana yanıtlarında duyarlı mı, dirençli mi yoksa orta düzeyde dirençli mi olduğunun belirlenmesi elde edilen zon çapları CLSI document M100-S17 (M2) dekilerle karşılaştırılarak gerçekleştirilir. 8 Disk difüzyon duyarlılık testlerini etkileyen çeşitli faktörler tanımlanmıştır. Bunlar besiyeri, agar derinliği, disk potensi, inokülum konsantrasyonu, ph ve test organizmaları tarafından β-laktamaz üretimidir. 1,5,9,10 VII REAKTİFLER Haemophilus Test Medium Agar 1 Litre Saf Su için Yaklaşık Formül* Sığır Eti Ekstraktı...2,0 g Maya Ekstraktı...5,0 g Kazein Asit Hidrolizatı... 17,5 g Hematin... 15,0 mg Nişasta...1,5 g Nikotinamid Adenin Dinükleotid... 15,0 mg Agar... 17,0 g *Performans kriterlerini karşılamak üzere gereken şekilde ayarlanmış ve/veya desteklenmiştir. Uyarılar ve Önlemler: In vitro Diagnostik Kullanım içindir. Aşırı nem gözlenirse, tabanı dengeli bir kapak üzerinde ters çevirin ve inkübasyon esnasında plağın altı ve üstü arasında bir engel oluşmasını önlemek için havayla kurumasını sağlayın. Tüm prosedürler boyunca mikrobiyolojik tehlikelere karşı uygun aseptik teknikleri ve belirlenen önlemleri uygulayın. Kullanımdan sonra, hazırlanan plaklar, örnek kapları ve diğer kontamine malzemeler atılmadan önce otoklavlanarak sterilize edilmelidir. Saklama Talimatları: Alındıktan sonra, plakları karanlıkta 2 8 C de saklayın. Dondurmaktan ve fazla ısıtmaktan kaçının. Kullanıma hazır olana kadar açmayın. Işığa maruz kalmamasını sağlayın. Kullanılmadan önce 2 8 C de orijinal kaplı ambalajlarıyla saklanan hazırlanmış plaklar, son kullanma tarihine kadar ve tavsiye edilen inkübasyon sürelerinde inkübe edilebilir. Ortamın inokülasyon öncesinde oda sıcaklığına gelmesini bekleyin. Ürünün Bozulması: Mikrobiyal kontaminasyon belirtileri, renk değişimi, kuruma veya diğer bozulma belirtileri görmeniz halinde plakları kullanmayın. 2

3 VIII ÖRNEK TOPLAMA VE KULLANMA Bu besiyeri klinik örneklerle veya karışık kültürlerle doğrudan kullanılmak amacıyla tasarlanmamıştır. Disk difüzyonu duyarlılık testi saf kültürlerle kullanım için tasarlanmıştır. Gram boya ve Haemophilus un tahminleyici tespiti gereklidir. Örnek toplama ve işleme prosedürlerinin ayrıntıları için uygun metinlere bakın. 11,12 IX PROSEDÜR Sağlanan malzemeler: Haemophilus Test Medium Agar Gerekli fakat sağlanmamış malzemeler: 1. Mueller Hinton Broth, Mueller Hinton II Broth gibi 5 ml oranında tüpe konmuş inokülum broth u veya standart inokülum hazırlanması için %0,9 tuz çözeltisi. 2. İnokülumun ayarlanması için 0,5 McFarland baryum sülfat standardı (99,5 ml 0,18 M [0,36 N] H 2SO 4 e [%1 h/h] 0,5 ml 0,048 M BaCl 2 [%1,175 a/h BaCl 2 2 H 2O] ekleyerek hazırlanır). 3. İnokülumun süspansiyonunun türbiditesini 0,5 McFarland standardına eşdeğer olacak şekilde ayarlamak için fotometrik bir cihaz. 4. Yukarıdaki materyallere (1-3) alternatif olarak, BBL Prompt Inoculation System (volümetrik inokülum hazırlama aracı) kullanılabilir. 13,14 5. Kontrol kültürleri - Haemophilus influenzae ATCC 49247, ATCC ve ATCC BBL Sensi-Disc duyarlılık test diskleri gibi, belirli miktarda antimikrobiyal ajan aşılanmış kağıt diskler. 7. Sensi-Disc Self-Tamping 12-Place Dispenser gibi bir disk dağıtma cihazı. 8. Kayan kumpas veya cetvel gibi, zon çaplarını en yakın tam milimetreye yuvarlayarak ölçen veya yorumlayan cihaz. 1 Alternatif olarak, model kalıpları ve zon ölçme etiketlerini içeren bir Sensi-Disc Zone Interpretation Set (Kat. No ) temin edilebilir. 9. Hızlı bir β-laktamaz testi gerçekleştirmek için BBL Cefinase Diskleri gibi bir reaktif veya cihaz. 10. %5 CO 2 içeren bir atmosfer oluşturan bir inkübatör veya CO 2 açısından zengin aerobik atmosfer oluşturan başka bir cihaz. 11. Yardımcı kültür ortamı, reaktifler ve gerekli laboratuvar ekipmanı. Test Prosedürü: 1. Kültür saflığını doğrulamak ve Haemophilus un kesin olmayan tespitini doğrulamak için duyarlılık testine başlamadan önce bir Gram boya hazırlayın. 2. İnokülum kaynağı olarak bir gecelik (tercihen saat) Chocolate Agar plağından doğrudan alınan birkaç iyi izole edilmiş koloni kullanın. 3. Penisilin, ampisilin veya amoksiline dirençli suşların hızlı saptanması için hızlı bir β-laktamaz testi kullanılmalıdır. 4. Mueller Hinton Broth, Mueller Hinton II Broth veya %0,9 tuz çözeltisi içerisinde bir test organizması süspansiyonu hazırlayın. Bu süspansiyon, fotometrik bir cihaz kullanılarak 0,5 McFarland standardı türbiditesine ayarlanmalıdır. Bu süspansiyon yaklaşık olarak 1 ila 4 x 10 8 CFU/mL içerir. Yüksek inokülum konsantrasyonları bazı β-laktam antibiyotiklerle, özellikle H. influenzae nın β-laktamaz üreten suşları test edilirken hatalı-dirençli sonuçlara yol açabileceğinden bu süspansiyon hazırlanırken dikkat edilmelidir. 1 Kullanılan ayarlama yönteminin yaklaşık olarak 1 ila 4 x 10 8 CFU/mL içeren inokülum oluşturduğunu doğrulamak için, inokülum süspansiyonlarının periyodik olarak seyreltimini ve plak sayımlarını gerçekleştirin. 5. Türbidite ayarlanması olmaksızın, inokülumların doğrudan standardizasyonuna olanak tanıyan BBL Prompt Inoculation System gibi cihazların kullanıldığı alternatif yöntemler rutin test prosedürleri için kullanılabilir. 13 Bu sistem H. influenzae nın test edilmesi için de kullanılabilir İnokülum bulanıklığının ayarlanmasını takiben 15 dakika içinde uygun şekilde seyreltilen inoküluma steril bir pamuk swab batırın ve kalan sıvıyı tüpe akıtmak için tüpün iç kenarı boyunca birkaç kez kuvvetlice çevirin. 7. İnokülasyonun eşit dağılması için her sürme işleminden sonra plağı 60º çevirerek tüm agar yüzeyini üç kez inoküle edin. Son adım olarak, agar yatağının kenarına sürün. 8. İlaç aşılanmış diskleri uygulamadan önce, varsa yüzey neminin emilmesi için kapak 3 5 dakikalığına aralık bırakılabilir ve plak oda sıcaklığında tutulabilir ama bu süre 15 dakikayı aşmamalıdır. 9. Diskleri bir antimikrobiyal disk dağıtıcı aracılığıyla aseptik önlemler alarak uygulayın. Birçok antimikrobiyal ajan diğer organizmalar ile karşılaştırıldığında Haemophilus a karşı daha geniş inhibisyon zonları oluşturur. Bu sebeple, aşağıdakilerden en fazla altı tanesini içerecek şekilde, tek bir 100 mm lik plağa en fazla dört antimikrobiyal disk ve 150 mm lik plağa en fazla dokuz antimikrobiyal disk koyulmalıdır: üçüncü kuşak sefalosporinler (örn., sefotaksim, seftazidim, seftriakson, seftioksim), aztreonam, imipenem veya siprofloksasin. Diskler agara yerleştirildikten sonra, besiyeri yüzeyi ile tam temas sağlamak için bunları steril bir iğne veya forseps ile bastırın. Diskler Sensi-Disc Self Tamping 12-Place Dispenser kullanılarak yerleştirilmişse bu adım gerekli değildir (tokmaklar kartuş bulunmayan deliklerden gelmeyecektir). 3

4 X 10. Diskler uygulandıktan sonra 15 dakika içerisinde, plakları ters çevirin ve %5 karbondioksit ile zenginleştirilmiş aerobik atmosferde 35 C de saat boyunca inkübe edin. 11. Bir HTM Agar plağına H. influenzae ATCC sürün ve besiyerinin yeterli gelişimi destekleyip desteklemediğini saptamak için duyarlılık testi plakları ile birlikte inkübe edin. Kullanıcı Tarafından Kalite Kontrolü: Kalite Kontrol Prosedürleri ne bakın. Her duyarlılık testi gerçekleştirildiğinde veya CLSI standardına göre yeterli performans belgelenebilmiş ise haftada bir defa kontrol kültürleri dahil edilmelidir. 1 Doğru zon çapları için M100-S17 (M2) ye başvurun. 8 SONUÇLAR 1. İnkübasyondan saat sonra plakları inceleyin. Birleşik bir gelişim alanı elde edilmelidir. Yalnızca izole koloniler gelişirse, inokülum çok zayıftır ve test tekrar edilmelidir. 2. Kumpas, cetvel veya bu amaç için hazırlanmış bir şablon kullanarak, en yakın milimetreye yuvarlayarak, disk çapını da dahil etmek suretiyle tam inhibisyon zonlarının (çıplak gözle karar vererek) çapını ölçün. Ölçme cihazı, siyah, yansıtıcı olmayan arka plana tutulan ve üstten aydınlatılan plağın arkasında tutulur. Son nokta çıplak gözle saptanabilen, hiçbir görünür gelişim göstermeyen alan olarak alınmalıdır. Belirgin inhibisyon zonunun kenarına yakın, güçlükle saptanabilen küçük kolonilerin zayıf gelişimlerini göz ardı edin. Trimetoprim ve sülfonamidler ile, besiyerindeki antagonistler zayıf gelişime neden olabilir bu sebeple, zayıf gelişimleri (gelişimin %20 veya daha azı) göz ardı edin ve zon çapını belirlemek için daha belirgin olan sınırı ölçün. 3. Klinik Haemophilus izolatları ile elde edilen sonuçların yorumlanması için CLSI document M100-S17 (M2) ye bakın. 8 Elde edilen zon çaplarına bağlı olarak sonuçlar dirençli, orta düzeyde dirençli veya duyarlı olarak bildirilebilir. NOT: Antimikrobiyal disklerin revize edilmiş tablolarını ve yorumlayıcı standartları içeren, CLSI Document M2-A9 a ek tablolar periyodik olarak yayınlanmaktadır. Güncel öneriler için son tablolara bakılmalıdır. Güncel yayınlar hakkında bilgi için, yerel BD temsilciniz ile irtibata geçin. Standardın tamamı ve ek bilgiler 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, PA ABD adresindeki Clinical and Laboratory Standards Institute ten (CLSI) (Klinik ve Laboratuvar Standartları Kurumu) istenebilir. (610) β-laktamaz üretimi açısından pozitif olan organizmalar, elde edilen zon çaplarına bakmaksızın ampisiline dirençli kabul edilmelidir. H. influenzae nın ampisiline dirençli suşlarının β-laktamaz aktivitesi yokluğuna göre tanımlandığı unutulmamalıdır. 15 Bu sebeple, zon çapı ampisiline direnci işaret ediyorsa, izolat, β-laktamaz testi negatif olsa bile o ilaca karşı dirençli olarak bildirilmelidir. XI PROSEDÜRÜN KISITLI OLDUĞU ALANLAR Bazı organizma-antimikrobiyal ajan kombinasyonlarında, inhibisyon zonukeskin sınırlı kenarlara sahip değildir ve hatalı yorumlamaya neden olabilir. Hatalı inokülum konsantrasyonu doğru olmayan sonuçlar verebilir. İnokülum çok yoğun ise inhibisyon zonu çok küçük olabilir ve inokülum çok zayıfsa çok geniş ve ölçümü zor olabilir. Aşağıdaki disklerden en fazla altı tanesini içerecek şekilde, tek bir 100 mm lik plağa en fazla dört antimikrobiyal disk ve 150 mm lik plağa en fazla dokuz antimikrobiyal disk koyulmalıdır: üçüncü kuşak sefalosporinler (örn., sefotaksim, seftazidim, seftriakson, seftioksim), aztreonam, imipenem veya siprofloksasin. Antimikrobiyal disklerin uygun olmayan şekilde saklanması potens kaybına veya hatalı dirençli sonuçlara neden olabilir. Bir organizmanın spesifik bir antimikrobiyal ajana in vitro duyarlılığı ajanın in vivo olarak etkili olacağı anlamına gelmez. Sonuçların yorumlanmasında yol gösterici olması açısından ilgili metinlere bakın. 5,10 XII PERFORMANS ÖZELLİKLERİ A. Tekrarlanabilirlik Çalışması 16 Gerçekleştirildiği zamanda NCCLS tarafından önerilen antimikrobiyal disk duyarlılık test prosedürü (M2-A4) kullanılarak üç HTM Agar üretim lotu değerlendirilmiştir. 17 Çalışmada toplam 12 antimikrobiyal ajan (amoksisilin/klavulanat, ampisilin, ampisilin/sulbaktam, sefaklor, sefonisid, seftriakson, sefuroksim, kloramfenikol, siprofloksasin, rifampin, tetrasiklin, trimetoprim/sulfametokzazol) ve 14 H. influenzae suşu kullanılmıştır. 14 suştan yedisi American Type Culture Collection (ATCC) suşu; geri kalan yedisi ise, altı klinik izolat ve bir endüstriyel kalite kontrol suşunu içeren stok kültürlerdir. Üç besiyeri lotunun her biri ile elde edilen zon çapları M2-A4 te yorumlayıcı kriterler (Tablo 2A) ile karşılaştırılmıştır. 17 Bir lotta yalnızca altı durumda diğer iki lota kıyasla farklı bir yorumlayıcı kategori oluşturan zonlar elde edilmiştir. Altı tutarsızlıktan dördünü tetrasiklin, birini sefaklor ve birini sefuroksim oluşturmaktadır. Tetrasiklin durumunda, sonuç duyarlı veya orta düzeyde dirençliyorumlayıcı kategori oluşturmuştur (küçük hata). Sefaklor ve sefuraksim ile, oluşan 1 mm farklılık orta düzeyde dirençli veya dirençli kategoriyi işaret eden küçük bir hata vermiştir. Bu çalışmada â-laktamaz üreten beş H. influenzae suşu mevcuttur. Bu suşların her biri ile, her HTM lotu ampisilin ile, dirençli olarak yorumlanan zon çapları oluşturmuştur. Beş suştan ikisi aynı zamanda kloramfenikol asetiltransferaz (CAT) üretmiştir. Bu iki suş ile elde edilen kloramfenikol zonları, kloramfenikol direnci ile tutarlıdır. 18,19 4

5 B. Mueller Hinton Chocolate Agar ile Karşılaştırma 16 NCCLS disk prosedürü, HTM Agar ve Mueller Hinton Chocolate Agar üzerinde 213 H. influenzae klinik izolatı ile gerçekleştirilmiştir. 17,20 Test edilen antimikrobiyal ajanlar ampisilin, ampisilin-sulbaktam, amoksisilin-klavulanat ve kloramfenikoldür. Bunlar zon çapı yorumlayıcı kriterleri Mueller Hinton Chocolate Agar için tanımlanmış tek antimikrobiyal ajanlardır. 21,22 Aşağıdaki sonuçlar elde edilmiştir. Haemophilus Test Medium Agar S I R Mueller Hinton S Chocolate Agar I R Benzerlik: 99.6% S = Duyarlı I = Orta Düzeyde Dirençli R = Dirençli Ampisilin ile iki büyük, bir küçük hata görülmüştür. Her iki büyük hatada da HTM dirençli bir sonuç verirken, Mueller Hinton Chocolate Agar duyarlı bir sonuç vermiştir. Bu izolatların her ikisi de β-laktamaz pozitiftir. Bu sebeple, dirençli sonuç doğrudur. Küçük hata HTM Agar da orta düzeyde dirençli sonuç veren ve Mueller Hinton Chocolate Agar da duyarlı sonuç veren bir izolatta görülmüştür. XIII TİCARİ TAKDİM ŞEKLİ Kat. No. Açıklama BBL Haemophilus Test Medium Agar, 8 li plak paketi (150 x 15 mm lik) BBL Haemophilus Test Medium Agar, 10 lu plak paketi (100 x 15 mm lik) XIV REFERANSLAR 1. Clinical and Laboratory Standards Institute Approved standard: M2-A9. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, 9th ed. CLSI, Wayne, Pa. 2. Bauer, A.W., W.M.M. Kirby, J.C. Sherris, and M. Turck Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am. J. Clin. Pathol. 45: Ryan, K.J., F.D. Schoenknecht, and W.M.M. Kirby Disc sensitivity testing. Hospital Practice 5: Barry, A.L., F. Garcia, and L.D. Thrupp An improved single disk method for testing the antibiotic susceptibility of rapidly growing pathogens. Am. J. Clin. Pathol. 53: Thornsberry, C., T.L. Gavan, E.H. Gerlach Cumitech 6, New developments in antimicrobial agent susceptibility testing. Coordinating ed., J.C. Sherris. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 6. Jorgensen, J.H., J.S. Redding, L.A. Maher, and A.W. Howell Improved medium for antimicrobial susceptibility testing of Haemophilus influenzae. J. Clin. Microbiol. 25: Jorgensen, J.H., A.W. Howell, and L.A. Maher Antimicrobial susceptibility testing of less commonly isolated Haemophilus species using Haemophilus test medium. J. Clin. Microbiol. 28: Clinical and Laboratory Standards Institute CLSI disk diffusion supplemental tables, M100-S17 (M2). CLSI, Wayne, Pa. 9. Ericsson, H.M., and J.C. Sherris Antibiotic sensitivity testing. Report of an international collaborative study. Acta. Pathol. Microbiol. Scand. Suppl. 217: Jorgensen, J.H., J.D. Turnidge, and J.A. Washington Antibacterial susceptibility tests: dilution and disk diffusion methods, p In P.R. Murray, E.J. Baron, M.A. Pfaller, F.C. Tenover, and R.H. Yolken (ed.), Manual of clinical microbiology, 7th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 11. Isenberg, H.D., FD. Schoenknecht, and A. von Graevenitz Cumitech 9, Collection and processing of bacteriological specimens. Coordinating ed.,s.j. Rubin. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 12. Miller, J.M., and H.T. Holmes Specimen collection, transport, and storage, p In P.R. Murray, E.J. Baron, M.A. Pfaller, F.C. Tenover, and R.H. Yolken (ed.), Manual of clinical microbiology, 7th ed. Americn Society for Microbiology, Washington, D.C. 13. Baker, C.N., C. Thornsberry, and R.W. Hawkinson Inoculum standardization in antimicrobial susceptibility testing: evaluation of overnight agar cultures and the rapid inoculum standardization system. J. Clin. Microbiol. 17: Marsik, F., G. Evans, J. Fowler, and L. Thompson Comparison of the BBL Prompt system, Abbott A-Just, and visual method for the preparation of Haemophilus influenzae inoculum for the Bauer-Kirby procedure, abstr. C-67, p Abstr. 89th Annu. Meet. Am. Soc. Microbiol Doern, G.V., J.H. Jorgensen, C. Thornsberry, D.A. Preston, T.A. Tubert, J.S. Redding, and L.A. Maher A national collaborative study of the prevalence of antimicrobial resistance among clinical isolates of Haemophilus influenzae. Antimicrob. Agents Chemother. 32: Data on File, BD Diagnostic Systems, Sparks, Md. 5

6 17. National Committee for Clinical Laboratory Standards Approved standard: M2-A4. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, 4th ed. NCCLS, Villanova, Pa. 18. Azemun, P., T. Stull, M. Roberts, and A.L. Smith Rapid detection of chloramphenicol resistance in Haemophilus influenzae. Antimicrob. Agents Chemother. 20: Doern, G.V., G.S. Daum, and T.A. Tubert In vitro chloramphenicol susceptibility testing of Haemophilus influenzae: disk diffusion procedures and assays for chloramphenicol acetyltransferase. J. Clin. Microbiol. 25: National Committee for Clinical Laboratory Standards Approved standard: M2-A3. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, 3rd ed. NCCLS, Villanova, Pa. 21. National Committee for Clinical Laboratory Standards Second Informational Supplement: M100-S2. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. NCCLS, Villanova, Pa. 22. Doern, G.V. and R.N. Jones Antimicrobial susceptibility testing of Haemophilus influenzae, Branhamella catarrhalis, and Neisseria gonorrhoeae. Antimicrob. Agents Chemother. 32: Becton, Dickinson and Company BENEX Limited 7 Loveton Circle Bay K 1a/d, Shannon Industrial Estate Sparks, Maryland USA Shannon, County Clare, Ireland Tel: Fax: ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection. Prompt is a trademark of 3M. BD, BD Logo, BBL, Cefinase, IsoVitaleX and Sensi-Disc are trademarks of Becton, Dickinson and Company BD 6