Klinik Olarak Parvovirus B19 İnfeksiyonu Ön Tanılı Olguların Virolojik Takibi

Benzer belgeler
KONYA BÖLGESİNDE ÇEŞİTLİ YAŞ GRUPLARINDA PARVOVİRUS B19 SEROPREVALANSININ ARAŞTIRILMASI*

TÜBERKÜLOZUN MOLEKÜLER TANISINDA GÜNCEL DURUM

İZMİR DEKİ GEBELERDE RUBELLA VE SİTOMEGALOVİRÜS İNFEKSİYONU SEROPREVALANSI RUBELLA AND CYTOMEGALOVIRUS INFECTION IN PREGNANTS IN IZMIR, TURKEY

Ekinokokkozis. E. granulosus Kistik Ekinokokkozis. E. multilocularis Alveoler Ekinokokkozis. E. vogeli ve E. oligoarthrus Polikistik Ekinokokkozis

Gebelerde Anti HIV Sonuçlarının Değerlendirilmesi

Kırım Kongo Kanamalı Ateş hastalarında ağırlık ve ölüm riskinin tahmininde plazma cell-free DNA düzeyinin önemi

Gebelikte İnfeksiyonların Değerlendirilmesi

TOKSOPLAZMA İNFEKSİYONUNUN LABORATUVAR TANISI UZM.DR.CENGİZ UZUN ALMAN HASTANESİ

IV. KLİMUD Kongresi, Kasım 2017, Antalya

Mikrobiyolojide Moleküler Tanı Yöntemleri. Dr.Tuncer ÖZEKİNCİ Dicle Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji A.D

Konjenital CMV Enfeksiyonu: Türkiye deki Durum

HIV TANISINDA YENİLİKLER

İnci TUNCER S.Ü. Selçuklu Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı, KONYA

CMV lab.tanı Hangi test, ne zaman, laboratuvar sonucunun klinik anlamı?

Gebelerde Rubella (Kızamıkçık) Yrd.Doç.Dr.Çiğdem Kader


Akut ve Kronik Hepatit B Aktivasyonunun Ayrımı. Dr. Murat Kutlu Pamukkale Üniversitesi Tıp Fakültesi

Olgu Sunumu (İmmünyetmezlikli hastada viral enfeksiyonlar) Dr. A. Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

Halis Akalın, Nesrin Kebabcı, Bekir Çelebi, Selçuk Kılıç, Mustafa Vural, Ülkü Tırpan, Sibel Yorulmaz Göktaş, Melda Sınırtaş, Güher Göral

GİRİŞ. Kan dolaşımı enfeksiyonları (KDE) önemli morbidite ve mortalite sebebi. ABD de yılda KDE, mortalite % 35-60

Doç. Dr. Kenan MİDİLLİ İ.Ü. Cerrahpaşa Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

E. Ediz Tütüncü KLİMİK 2013 XVI. Türk Klinik Mikrobiyoloji ve İnfeksiyon Hastalıkları Kongresi 15 Mart 2013, Antalya

HIV/AIDS ve Diğer Retrovirus İnfeksiyonları,laboratuvar tanısı ve epidemiyolojisi

Dünyada ve Türkiyede Hepatit B ve Hepatit C Epidemiyolojisi. Dr Meral Sönmezoğlu Yeditepe Üniversitesi Hastanesi

Nilgün Çerikçioğlu Marmara Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

Klinik Mikrobiyoloji de Enzimli İmmün Deney Enzyme Immuno Assay. Dr. Dilek Çolak

NEVŞEHİR İLİNDE HEPATİT C VİRÜS GENOTİP DAĞILIMI İLE SERUM ALANİN AMİNOTRANSFERAZ VE KANTİTATİF SERUM HCV RNA DÜZEYLERİ İLİŞKİSİ*

Yrd. Doç. Dr. Koray Ergünay MD PhD Hacettepe Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD. Viroloji Ünitesi

İMMUNOLOJİK TANI YÖNTEMLERİ

IL28B genotip tayini kronik hepatit B hastalarında oral antiviral tedavi cevabını öngörmede kullanılabilir mi?

TLERDE SEROLOJİK/MOLEK HANGİ İNCELEME?) SAPTANMASI

KENE KAYNAKLI ENSEFALİTLERDE LABORATUVAR TANI

Serum ALT Düzeyleri, HCV RNA Ve Anti-HCV Arasındaki İlişki #

Akut Hepatit B ve Kronik Hepatit B Reaktivasyonu Ayrımı. Dr. Şafak Kaya SBÜ Gazi Yaşargil SUAM Enfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji

KONU 24A HEPATİT C. Tekin AKPOLAT, Cengiz UTAŞ

Prof. Dr. Rabin SABA Akdeniz Üniversitesi Tıp Fakültesi Memorial Sağlık Grubu

KISA BİLDİRİ: HEPATİT D VİRUS (HDV) RNA POZİTİFLİĞİ İLE HDV ANTİKORLARI ARASINDAKİ İLİŞKİNİN DEĞERLENDİRİLMESİ

Gebelik ve Enfeksiyonlar. Prof.Dr. Levent GÖRENEK

Brusellozda laboratuvar tanı yöntemleri

PERİNATAL HERPES VİRUS İNFEKSİYONLARI. Uzm.Dr.Cengiz Uzun Alman Hastanesi Klinik Mikrobiyoloji ve İnfeksiyon Hastalıkları

Hepatit B Virus (HBV) İnfeksiyonunda Serolojik Belirteçler, Transaminaz Düzeyleri Ve HBV DNA nın Birlikte Değerlendirilmesi #

Piperasilin-Tazobaktam(TZP) a Bağlı Hematolojik İstenmeyen Etkiler

VİRUS HASTALIKLARINDA TANI YÖNTEMLERİ

Sağlık Bilimleri Üniversitesi Tepecik Eğitim ve Araştırma Hastanesi Çocuk Hematoloji ve Onkoloji Kliniği

Klinik ve Deneysel Araştırmalar Dergisi Cilt/Vol 1, No 2, Journal of Clinical and Experimental A. Tekin ve Investigations

ERİŞKİN HASTADA İNFLUENZAYI NASIL TANIRIM?

Gebelerde Toxoplasma gondii Seropozitifliğinin Değerlendirilmesinde İstenen Testlerin Önerilen Tanı Algoritmasına Uygunluğunun Değerlendirilmesi

HEPATİT A TANI, TEDAVİ, KORUNMA

WEİL-FELİX TESTİ NEDİR NASIL YAPILIR? Weil Felix testi Riketsiyozların tanısında kullanılır.

HPV Moleküler Tanısında Güncel Durum. DNA bazlı Testler KORAY ERGÜNAY 1.ULUSAL KLİNİK MİKROBİYOLOJİ KONGRESİ

COOMBS TESTİ NASIL YAPILIR

Hepatit C Virüsü: Tanıda Serolojik ve Moleküler Yöntemlerin Yeri. Üner Kayabaş İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi Malatya

İnfektobezite: Çocuklardaki Obezitede Adenovirüslerin Rolü

Q HUMMASI İÇİN RİSK GRUPLARINDA COXIELLA BURNETII YE KARŞI OLUŞAN ANTİKORLARIN ELISA VE IFA TESTLERİ İLE SAPTANMASI

Doğrudan klinik örnekte hızlı tanı. Prof. Dr. Cengiz ÇAVUŞOĞLU Ege Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD, Bornova, İZMİR

Anti-HIV Pozitif Bulunan Hastada Kesin Tanı Algoritması. Doç. Dr. Kenan Midilli İ.Ü. Cerrahpaşa Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

EPSTEIN-BARR VİRUS ENFEKSİYONLARI TANISINDA ELISA VE İMMUNOBLOT TESTLERİNİN KARŞILAŞTIRILMASI

VİRAL TANI KİTLERİ (GFJ-480)

HCV İNFEKSİYONUNUNDA ELISA, RIBA VE b-dna YÖNTEMLERİNİN KARŞILAŞTIRILMASI

Moleküler Testlerde Yöntem Geçerliliğinin Sınanması. Dr. Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

Özel Konakta Viral Hepatitler: «Gebelik» Dr. Berivan Tunca Kızıltepe Devlet Hastanesi

İstanbul da Anti-HIV-1 Pozitif Hastalarda HHV-8 Prevalansının Araştırılması*

Klinik Virolojide Moleküler Yöntemlerin Kullanımı

KLİNİK ÖRNEKLERDEN KANTİTATİF OLARAK HEPATİT C VİRUS RNA SININ SAPTANMASINDA COBAS AMPLICOR VE COBAS TAQMAN SİSTEMLERİNİN KARŞILAŞTIRILMASI

Kronik Delta Hepatiti Tanı ve Tedavi

Parvovirus B19. Genel Tıp Dergisi. Hatice Türk Dağı. Giriş. Selçuk Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı, Konya

Prediktör Testler ve Sıradışı Serolojik Profiller. Dr. Dilara İnan Isparta

Fungal Etkenler. Toplantı sunumları Dr.AyşeKalkancı. Santral Sinir Sistemi Enfeksiyonlarında Tanı. Ege Mikrobiyoloji Günleri-3

Viral gastroenteritler

Viral Hepatitler. Hepatit A Virus. Viral Hepatitler- Tarihsel Bakış. Hepatit Tipleri. Hepatit A Klinik Özellikler

Orta Doğu Solunum Sendromu Coronavirüs (MERS-CoV) İnfeksiyonu

Enzimlerinin Saptanmasında

Dr. Funda Şimşek SB Okmeydanı EAH Enfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji

Hepatit B Virüs Testleri: Hepatit serolojisi, Hepatit markırları

Varıcı Balcı F K Arslan A Sertöz R Altuğlu İ Ege Üniversitesi Tıp Fakültesi, Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı, İzmir, Türkiye

Key words: Toxoplasma gondii, ELISA, Kayseri

Servikal Erozyon Bulgusu Olan Kadınlarda HPV nin Araştırılması ve Genotiplerinin Belirlenmesi

BİLİŞSEL GELİŞİM GERİLİĞİ VE OTİSTİK SPEKTRUM BOZUKLUĞU OLAN ÇOCUKLARDA SERUM PROGRANULİN DÜZEYLERİ

İnfluenza A (H1N1) pdm09 Tanısında Hızlı Antijen Testi ile RT-PCR Testinin Karşılaştırılması

GEBELİKTE DİĞER VİRUS İNFEKSİYONLARI, TOKSOPLASMA VE LİSTERİA

İstanbul daki El Ayak Ağız Hastalığı Vakalarında Coxsackievirus A6 ve Coxsackievirus A16 nın Saptanması

Epstein-Barr virüs enfeksiyonlarında trombosit parametrelerinin değerlendirilmesi

AKUT VİRAL HEPATİT TEDAVİSİNDE ORAL ANTİVİRALLERİN YERİ DOÇ.DR.MUSTAFA KEMAL ÇELEN DİCLE ÜNİVERSİTESİ SAPANCA

İmmünokompetan Hastalarda CMV İnfeksiyonu

HEMODİYALİZ HASTALARINDA GÖRÜLEN İNFEKSİYON ETKENLERİ

Yöntem ve Test Seçimine Yaklaşım. Dr. Alpay Özbek Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji AD. Dokuz Eylül Üni. Tıp Fak. İZMİR

İdrar Tahlilinde Mitler U Z. DR. B O R A ÇEKMEN ACIL Tı P K L I NIĞI O K MEYDANı E Ğ I T IM VE A R A Ş Tı R MA HASTA NESI S AĞ L ı K B ILIMLERI Ü

Tanı. Asemptomatik.. Laboratuvar ile konur. Akut infeksiyonla, geçirilmiş enfeksiyonu ayırt etmek zor. Serolojik bulgular + Ultrasonografi

BELGELER. Dr. A. Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

MOLEKÜLER TANI VE TİPLENDİRME YÖNTEMLERİ

ANTİ-HCV POZİTİF SERUM ÖRNEKLERİNDE VİREMİ ORANLARININ VE ANTİ-HCV DÜZEYLERİ İLE İLİŞKİSİNİN ARAŞTIRILMASI*

Hepatit B virus kantitasyonunda iki farklı gerçek zamanlı PCR testinin karşılaştırılması: COBAS AmpliPrep/COBAS TaqMan ve ARTHUS QS-RGQ KİT

Hepatit B de atipik serolojik profiller HBeAg-antiHBe pozitifliği. Dr. H. Şener Barut Gaziosmanpaşa Üniversitesi Enfeksiyon Hastalıkları ve KM AD

Sekiz Aylık Dönemde Laboratuvarımızda Saptanan Hepatit B ve Hepatit D Seroprevalansı*

ZAMANINDA, SAĞLIKLI DOĞUM YAPAN ANNELERDE KIZAMIKÇIK İMMÜNİTESİNİN ELİZA YÖNTEMİ İLE DEĞERLENDİRİLMESİ

IX. BÖLÜM KRONİK HASTALIK ANEMİSİ TANI VE TEDAVİ KILAVUZU ULUSAL TEDAVİ KILAVUZU 2011

Gebelerde Sitomegalovirus İnfeksiyonu. Doğan Barış Öztürk Ulucanlar Göz EAH

KLİNİK ÖRNEKLERDE GERÇEK ZAMANLI MULTİPLEKS POLİMERAZ ZİNCİR REAKSİYONU YÖNTEMİYLE AKUT BAKTERİYEL MENENJİT TANISI

HCV ENFEKSİYONU SEROLOJİ VE NÜKLEİK ASİT TESTLERİNİN KLİNİK KULLANIMI

Yrd.Doç.Dr. Özgür Günal Enfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji AD

Transkript:

Klinik Olarak Parvovirus B19 İnfeksiyonu Ön Tanılı Olguların Virolojik Takibi Nilgün IŞIK(*), Ebru SABAHOĞLU(*), D.Murat IŞIK(**), Sema ANAK(***), Ali AĞAÇFİDAN(*), Emel BOZKAYA(*) (*)İstanbul Üniversitesi, İstanbul Tıp Fakültesi, Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı, Viroloji ve Temel İmmünoloji Bilim Dalı, İstanbul. (**)Uludağ Üniversitesi Tıp Fakültesi, Çocuk Sağlığı ve Hastalıkları Anabilim Dalı, Bursa. (***) İstanbul Üniversitesi, İstanbul Tıp Fakültesi, Çocuk Sağlığı ve Hastalıkları Anabilim Dalı, İstanbul. ÖZET Human Parvovirus B19 (B19) tüm dünyada yaygın olarak görülen, asemptomatik bir infeksiyon etkenidir. B19 Eritema İnfeksiyozum tablosu ile birlikte, kronik hemolitik anemili hastalarda aplastik kriz, artropati, nötropeni, trombositopeni ve fetal infeksiyonlara da yol açabilmektedir. Bu çalışmada 15 yaş altı çocuklarda (s=126) ve 20 yaş üstü erişkinlerde (s=44) B19 infeksiyonu tanısı amacıyla B19 özgül IgG ve IgM antikorları oranlarının belirlenmesi ve B19 özgül IgM antikorları pozitif bulunan hastaların Real-time PCR ile B19 DNA sının ölçülmesi amaçlanmıştır. Serum örnekleri Parvovirus B19 IgG/IgM kiti (Focus, USA) ile Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA) yöntemiyle taranmıştır. DNA miktarları ise LightCycler Parvovirus B19 Quantification kiti (Roche, Germany) ile Real-time PCR yöntemiyle saptanmıştır. B19 özgül IgM antikorları 13 hastada pozitif bulunurken, bu hastalarda B19 DNA, farklı oranlarda Real-time PCR ile pozitif bulunmuştur. B19 antikor oranları; 15 yaş altı çocuklarda IgG %26.9, IgM %9.5 ve 20 yaş üstü erişkin grubunda IgG %54.5 ve IgM %2.2 oranında bulunmuştur. Seroprevalansla ilgili daha güvenilir sonuçlar alınması için çok sayıda hasta ve değişik yaş gruplarında çalışmalar yapılması gerekmektedir. Anahtar kelimeler: İnsan Parvovirus B19, seroprevalans, ELISA, Real-time PCR SUMMARY Follow up of Patients Pre-Diagnosed as Parvovirus B19 Infection Human Parvovirus B19 (B19) infection is common worldwide, but is often asymptomatic. B19 can cause, besides Erythema Infectiosum, aplastic crisis in patients with chronic hemolytic anemia, arthropathy, neutropenia, thrombocytopenia, fetal infections. The aim of this study was to determine the rates of Parvovirus B19 specific IgG and IgM antibodies in children <15 years of age (n=126) and >20 years of adults (n=44) and to determine B19 DNA amounts in B19 specific IgM antibody positive patients by Real-time PCR. The sera were screened for the virus using Parvovirus B19 IgG/IgM kit (Focus, USA) with Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA) method. B19 DNA amounts were determined using LightCycler - Parvovirus B19 Quantification kit (Roche, Germany) by Real-time PCR method. B19 specific IgM antibody were found positive in 13 patients and different amounts of B19 DNA were found positive with Real-time PCR in these patients. The B19 specific antibodies rates was 26.9% for IgG and 9.5% for IgM in children <15 years of age and 54.5% for IgG, 2.2% for IgM in >20 years of adults. For taking accurate results about seroprevalence it must be done more studies including much more number of patients of different age groups. Key words: Human Parvovirus B19, seroprevalence, ELISA, Real-time PCR GİRİŞ Bilinen en küçük DNA virusu olan Human Parvovirus B19 (B19), 18-26 nm çapında, zarfsız bir mikroorganizmadır. Parvovirus genomu lineer, tek İletişim : Nilgün Işık e-posta nilis01@yahoo.com sarmallı, molekül ağırlığı 1.5-1.8 x10 6 dalton olan DNA molekülü içerir. İki yapısal (VP1 ve VP2), bir de yapısal olmayan (NS-1) proteini bu genomca kodlanmaktadır. Virusla infekte olunduğunda en sık görülen klinik tablo Eritema İnfeksiyozum dur. Ayrıca geçici 62

N. Işık ve ark. Klinik Olarak Parvovirus B19 İnfeksiyonu Ön Tanılı Olguların Virolojik Takibi aplastik kriz, herediter hemolitik anemi, fetal infeksiyonlar, nötropeni, trombositopeni ve geçici artrite de neden olabilir. Virus özellikle eritroid progenitör hücrelerde replikasyon yapar. Hastalığın en yaygın bulaşma yolu solunum sekresyonları ve yakın temasla olmaktadır. Ayrıca kan ve kan ürünlerinin transfüzyonu yoluyla da bulaş söz konusudur(1-4). Parvovirus infeksiyonlarının tanısı serumda B19 özgül IgG ve IgM antikorlarının veya viral DNA nın saptanmasıyla konulmaktadır(5-7). Çalışmamızda 15 yaş altı çocuklar ve 20 yaş üstü erişkinlerde B19 özgül IgG ve IgM antikorları oranlarını ve IgM pozitif örneklerde Real-time PCR ile DNA miktarlarının, belirli aralıklarla takiplerinin yapılması amaçlanmıştır. GEREÇ VE YÖNTEM Çalışmaya, İstanbul Tıp Fakültesi, Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı na Parvovirus B19 infeksiyonu ön tanısı olan ve laboratuar incelemesi için gönderilen 15 yaş altı 126 çocuk (50 kız, 76 erkek) ile 20 yaş üzeri 44 (27 kadın, 17 erkek) olgu alınmıştır. Olguların her birinden alınan 3 ml kan örneğinden serumlar ayrılarak B19 özgül IgG/IgM antikorları ELISA yöntemiyle (Parvovirus B 19 IgG/IgM kiti, Focus,USA) kit protokolüne uygun olarak yapılmıştır. Ayrıca B19 özgül IgM antikorları pozitif bulunan hastaların serum örneklerinden DNA izolasyonu High Pure Viral Nucleic Acid kiti (Roche, Germany) ile yapılmıştır. Real-time PCR ile B19 miktar tayinleri Light cycler-parvovirus B 19 Quantification kiti (Roche, Germany ) ile yapılmıştır. B19 özgül IgM antikorlarını pozitif bulduğumuz 13 hastadan (akut infeksiyonlu), IgM antikorları negatifleşene kadar 10 hafta süre ile alınan kan örneklerinde IgM antikorları ve Real-time PCR ile DNA miktarları ölçülmüştür. Böylece, IgM antikor titreleri negatifleşen hastalarda, DNA miktarlarının halen pozitif olup olmadığı değerlendirilmiştir. DNA izolasyonu : Kan örneklerinden ayrılan serumdan 200 ml alınarak üzerine 200 μl Poly A içeren solüsyon ve 50 μl proteinaz K ilave edilerek karışım 72 C de 10 dk inkübe edilmiştir ve çözelti kit (High Pure Viral Nucleic Acid kiti,roche, Germany) içinden çıkan filtreli tüplere boşaltılmıştır. Tüpler 8000 xg de 1 dk santrifüj edilmiştir. Daha sonra inhibitör uzaklaştırma çözeltisi ve yıkama solüsyonları ilave edilerek tekrar aynı devirde santrifüj edilmiştir. En son filtreli tüpler üzerine 50 μl sulandırma çözeltisi ilave edilerek santrifüj edilmiş ve ependorf tüplerinde toplanan DNA lar -80 C de Real-time PCR yapılana kadar saklanmıştır. Real-time PCR : DNA miktar tayini Real-time PCR ile LightCycler Parvovirus B19 Quantification kiti (Roche, Germany) kullanılarak yapılmıştır. PCR da B19 DNA sına spesifik fluoresan boyalı primerler kullanılmıştır. Bir probun 5 ucu LightCycler Red 640, diğer probun 3 ucu fluorescein ile işaretlidir. Yöntem, iki farklı fluoresan boya işaretli oligonükleotid ve amplifikasyon yapılacak ürün bulunan ortamda, oligonükleotidler birbirine iyice yaklaşınca (1-5 bp) bir enerji yaymasına ve bu enerji etkisiyle LightCycler Red 640 ın fluorescein ile birleşmesi anında daha uzun dalga boylu bir ışın yayılması esasına dayanır. Bu ışın 640 nm de ölçülür ve bu olaya Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET) denir. Ayrıca PCR da kite spesifik internal kontrolde kullanılmaktadır. Hasta sonuçları kit standartlarının (10 2-10 6 kopya/reaksiyon) oluşturduğu grafikten yararlanılarak, kantitatif olarak değerlendirilmiştir. BULGULAR Çalışmaya dahil edilen 15 yaş altı çocuklardan (s=126) alınan serum örneklerinin 34 ünde (%26.9) IgG ve 12 sinde (%9.5) IgM pozitif saptanmıştır. 20 yaş üstü erişkin grubu (s=44) serum örneklerinin 24 ünde (%54.5) IgG ve birinde (%2.2) IgM pozitif bulunmuştur. Bu iki grup içinde IgM pozitif bulunan 13 hastanın B19 DNA miktarları Real-time PCR ile pozitif bulunmuştur. Daha sonra IgM pozitif bulunan bu 13 hastadan birer hafta aralıklarla alınan kan örneklerinde ELISA ile IgM antikorları ve Real-time PCR ile DNA miktarları, olgularda IgM antikorları negatif bulunana kadar araştırılmıştır. Sonuçta dört 63

hastada 5. haftada, altı hastada 7. haftada ve üç hastada 9. haftada IgM antikorları negatif bulunmuştur. 10. haftada alınan kan örneklerinde hastaların tümünün IgM antikorları negatif olmasına rağmen Real-time PCR ile DNA miktarları düşük titrede pozitif bulunmuştur. Tablo 1 de B19 infeksiyonlu (s=13; IgM (+), IgG (+), DNA (+)) olgulardan, birer hafta aralıklarla (10 hafta süreyle) alınan kan örneklerindeki IgM antikorları ve DNA sonuçları gösterilmiştir. Bu hastalarda B19 özgül IgG antikorları 10 hafta süre ile alınan tüm örneklerde pozitif bulunmuştur. Tablo 1. B19 infeksiyonlu hastaların belirli aralıklarla alınan kan örneklerindeki B19 IgM antikorları ve DNA sonuçları 1. 5. Hafta 6. Hafta 7. 8. Hafta 9. 10. Hafta Sonuçları Sonuçları Sonuçları Sonuçları B19 DNA B19 B19 DNA B19 B19 DNA B19 B19 DNA B19 Hasta No IgM IgM IgM IgM 1 + + + + + + + - 2 + + + + + - + - 3 + + + - + - + - 4 + + + + + + + - 5 + + + + + - + - 6 + + + + + - + - 7 + + + - + - + - 8 + + + + + + + - 9 + + + - + - + - 10 + + + - + - + - 11 + + + + + - + - 12 + + + + + - + - 13 + + + + + - + - Onüç hastanın ortalama DNA miktarları; 1. 3. haftalar arası 10 6 10 5 kopya/reaksiyon, 4. 5. haftalar arası 10 4-10 3 kopya/reaksiyon, 6. 10. haftalar arası 10 2-10 1 kopya/reaksiyon arasında bulunmuştur. TARTIŞMA B19 infeksiyonu en sık okul çağı çocuklarda (5-15 yaş) görülse de tüm yaş gruplarında görülebilir. Erişkinlerin %65 i İnfeksiyon geçirmiştir (8). B19 prevalansı sağlıklı kadınlarda %57.8, gebe kadınlarda ise %65 olduğu bildirilmiştir (9,10). Almanya da yapılan bir çalışmada gebe kadınlarda B19 prevalansı %29 bulunmuştur (11). Kuveyt te yapılan bir çalışmada gebe kadınlarda 3. trimestr da parvovirus B19 prevalansı %16.5 olduğu, ayrıca 1. ve 2. trimestr gebeliklerde IgG prevalansının 3. trimestr a göre yüksek olduğu bildirilmiştir (12). Sodja ve ark. (13) tarafından Çekoslavakya da yapılan bir çalışmada B19 IgG prevalansı 0-4 yaş grubu çocuklarda %9.8, 5-14 yaş grubu çocuklarda %27-35.7 ve 15 yaş üzerinde ise %53.3-57.7 olarak bildirilmiştir. Danimarka da yapılan bir çalışmada 1-5 yaş grubu çocuklarda prevalans %37 ve 50 yaş üzeri grupta ise %87 olarak saptanmıştır (14). Alsaeid ve ark. (15) Kuveyt te yaptıkları çalışmada IgG prevalansı 2-16 yaş grubunda %17.4 olarak saptamışlardır. Tayland da B19 prevalansının çocuklarda ortalama %20.1, Hindistan da ise B19 prevalansı 1-5 yaş grubu çocuklarda %8.9, 15 yaş üzeri grupta ise %70 olarak bildirilmiştir (16,17). Çalışmamızda B19 özgül IgG antikor oranları, 15 yaş altı çocuklarda %26.9, 20 yaş üstü grupta ise %54.5 olarak saptanmıştır. Sonuçlarımız diğer ülke 64

N. Işık ve ark. Klinik Olarak Parvovirus B19 İnfeksiyonu Ön Tanılı Olguların Virolojik Takibi sonuçları ile karşılaştırıldığında, başta Çekoslovakya olmak üzere elde edilen sonuçların birbirine yakın değerler olduğu görülmüştür. Prevalansın yaşla orantılı olarak arttığı, risk gruplarına göre ve hastaların immun durumlarına göre değiştiği bilindiğinden bu durumlara bağlı olarak, detaylı çalışmalara ihtiyaç duyulmaktadır(16). Bu sebeplerden dolayı, ülkemizdeki B19 prevalansının belirlenmesi için çok sayıdaki örnek ve sınıflandırılmış yaş gruplarında daha detaylı çalışmaların yapılmasının belirleyici olacağını düşünmekteyiz. B19 tanısında, özgül IgG ve IgM antikorlarının taranmasının yanı sıra PCR sistemlerine dayalı yöntemlerle B19 DNA miktar tayinleri de tanı koydurucudur. B19 tanısına yönelik yapılan çalışmalarda, özellikle son yıllarda Real-time PCR ve diğer PCR sistemlerine dayalı yöntemler kullanılarak, hızlı tanıya gidilebileceğine ilişkin çalışmalar bildirilmiştir. Manaresi ve ark. (5) yaptıkları bir çalışmada, Real-time PCR ile serumda B19 DNA miktar tayininin, B19 infeksiyonunun hızlı tanısında kullanılabileceğini belirtmişlerdir. Realtime PCR sistemi ile reinfeksiyon görülen immunsüprese çocuklarda vireminin kantitatif olarak ölçülmesinin tedavilerin planlanmasında yararlı olacağı vurgulanmıştır (7). Diğer bir çalışmada ise yanlış negatif sonuçların alınmasını engellemek için, Real-time PCR yönteminin kullanılabileceği bildirilmiştir (18). Aberhan ve ark. (19) özellikle kan ve plazma ürünlerine Real-time PCR ile B19 DNA miktar tayini yapılmasının gerekliliğini bildirmişlerdir. Bu çalışmada, B19 özgül IgG ve IgM antikor titrelerini pozitif bulduğumuz 13 hastanın serum örneklerinde Real-time PCR ile DNA miktar tayini yapılmış ve tamamı yüksek titrede pozitif bulunmuştur. Bu hastaların birer hafta aralıkla alınan 10 örneğinde IgM antikorları 9. haftada negatif bulunurken, DNA miktarları 10. haftada halen düşük titrede pozitif bulunmuştur. Sonuçta B19 infeksiyonu tanısıyla ilgili olarak, özgül IgM antikorları negatif bulunsa dahi B19 özgül DNA miktar sonuçları pozitif bulunabilmektedir. Bu nedenle antikor yanıtı yetersiz immun yetmezlikli hastalarda DNA miktarlarının Real-time PCR ile test edilmesinin yararlı olabileceği düşünülmelidir. KAYNAKLAR 1. Anderson MJ: Human Parvoviruses, Zuckerman AJ, Banatvala JE, Pattison JR (eds): Principles and Practice of Clinical Virology. p 507-16. John Willey, New York (1987). 2. Clewley JP: PCR detection of Parvovirus B19, Persing DH, Smith TF, Tenover FC, White TJ (eds): Diagnostic Molecular Microbiology: Principles and Applications. p367-72, American Society for Microbiology, Washington DC (1993). 3. Krugman S, Katz S, Wilford C, Gershon A: Infectious Disease of Children, p 326-34, 9th ed. Mosby, St Louis (1998). 4. Fridell E, Cohen BJ, Wahren B: Evaluation of a synthetic-peptide enzyme-linked immunosorbent assay for immunoglobulin M to human parvovirus B19. J Clin Microbiol 29:1376 (1991). 5. Manaresi E, Gallinella G, Zuffi E, Bonvicini F, Zerbini M, Musiani M: Diagnosis and quantitative evaluation of parvovirus B19 infections by real-time PCR in the clinical laboratory. J Med Virol 67:275 (2002). 6. Saito T, Munakata Y, Fu Y, et al: Evaluation of antiparvovirus B19 activity in sera by assay using quantitative polymerase chain reaction. J Virol Methods 107:81 (2003). 7. Harder TC, Hufnagel M, Zahn K, et al: New LightCycler PCR for rapid and sensitive quantification of parvovirus B19 DNA guides therapeutic decision-making in relapsing infections. J Clin Microbiol 39:4413 (2001). 8. McClure WR: Mechanism and control of transcription initiation in prokaryotes. Ann Rev Biochem 54:171(1985). 9. Kyriazopoulou V, Simitsopoulou M, Bondis J, Diza E, Athanasiadis A, Frantzidou F, Souliou E: Human parvovirus B19: immunity of Greek females and prenatal investigation of hydrops fetalis. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 74:157 (1997). 10. Valeur-Jensen AK, Pedersen CB, Westergaard T, Jensen IP, Lebech M, Andersen PK, Aaby P, Pedersen BN, Melbye M: Risk factors for parvovirus B19 infection in pregnancy. JAMA 281:1099 (1999). 11. Friese K, Beichert M, Hof H, Weikel W, Falke D, Sickinger R, Melchert F: Incidence of congenital 65

infections. Geburtshilfe Frauenheilkd 51:890 (1991). 12. Makhseed M, Pacsa A, Ahmed MA, Essa SS: Pattern of parvovirus B19 infection during different trimesters of pregnancy in Kuwait. Infect Dis Obstet Gynecol 7:287 (1999). 13. Sodja I, Mrazova M, Smelhausova M, Kotrbova K, Pazdiora P, Bruj J, Stojanov I, Kadlecik D, Samal J: Seroprevalence of IgG antibodies against parvovirus B19 in the population of the Czech Republic. Epidemiol Mikrobiol Imunol 44:171(1995). 14. Heegaard ED, Petersen BL, Heilmann CJ, Hornsleth A: Prevalence of parvovirus B19 and parvovirus V9 DNA and antibodies in paired bone marrow and serum samples from healthy individuals. J Clin Microbiol 40:933 (2002). 15. Alsaeid K, Alsaeid M, Essa S, Dimitrov D, Pacsa A: Seroprevalence of human parvovirus B19 in children of a desert region. Ann Trop Paediatr 16:255 (1996). 16. Poovorawan Y, Theamboonlers A, Suandork P, Hirsch P: Prevalence of antibodies to parvovirus B 19 in Thailand. Southeast Asian J Trop Med Public Health 31:422 (2000). 17. Abraham M, Rudraraju R, Kannangai R, George K, Cherian T, Daniel D, Ramalingam S, Sridharan G: A pilot study on the seroprevalence of parvovirus B19 infection. Indian J Med Res 115:139 (2002). 18. Gruber F, Falkner FG, Dorner F, Hammerle T: Quantitation of viral DNA by real-time PCR applying duplex amplification, internal standardization, and twocolor fluorescence detection. Appl Environ Microbiol 67:2837 (2001). 19. Aberham C, Pendl C, Gross P, Zerlauth G, Gessner M: A quantitative, internally controlled real-time PCR Assay for the detection of parvovirus B19 DNA. J Virol Methods 92:183 (2001). 66