ELISA FOR MONITORING SEROCONVERSION IN INDIVIDUALS VACCINATED WITH INFLUENZA VIRUS VACCINE

Benzer belgeler
Yöntem ve Test Seçimine Yaklaşım. Dr. Alpay Özbek Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji AD. Dokuz Eylül Üni. Tıp Fak. İZMİR

Ekinokokkozis. E. granulosus Kistik Ekinokokkozis. E. multilocularis Alveoler Ekinokokkozis. E. vogeli ve E. oligoarthrus Polikistik Ekinokokkozis

HIV TANISINDA YENİLİKLER

Prediktör Testler ve Sıradışı Serolojik Profiller. Dr. Dilara İnan Isparta

İnfluenza Aşıları: Yenilik var mı?

Klinik Mikrobiyoloji de Enzimli İmmün Deney Enzyme Immuno Assay. Dr. Dilek Çolak

Grip Aşılarında Güncel Durum

VİRUS HASTALIKLARINDA TANI YÖNTEMLERİ

Yoğun Bakım Ünitesinde Gelişen Kandida Enfeksiyonları ve Mortaliteyi Etkileyen Risk Faktörleri

Hollanda da Avian Influenza nın İzleme (Monitoring) ve Sürveyansı. Ruth Bouwstra DVM PhD GD Animal Health

Yasemin Budama Kılınç1, Rabia Çakır Koç1, Sevim Meşe2, Selim Badur2,3

IV. KLİMUD Kongresi, Kasım 2017, Antalya

TOKSOPLAZMA İNFEKSİYONUNUN LABORATUVAR TANISI UZM.DR.CENGİZ UZUN ALMAN HASTANESİ

GİRİŞ. Kan dolaşımı enfeksiyonları (KDE) önemli morbidite ve mortalite sebebi. ABD de yılda KDE, mortalite % 35-60

Klinik Mikrobiyoloji Laboratuarında Validasyon ve Verifikasyon Kursu 12 Kasım 2011 Cumartesi Salon C (BUNIN SALONU) Kursun Amacı:

Hekimlerin Splenektomi Planlanan Hastalarda Aşılama Hakkındaki Bilgi ve Tutumlarının Değerlendirilmesi

TÜBERKÜLOZUN MOLEKÜLER TANISINDA GÜNCEL DURUM

Anti-HIV Pozitif Bulunan Hastada Kesin Tanı Algoritması. Doç. Dr. Kenan Midilli İ.Ü. Cerrahpaşa Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

Gebelikte İnfeksiyonların Değerlendirilmesi

TLERDE SEROLOJİK/MOLEK HANGİ İNCELEME?) SAPTANMASI

WEİL-FELİX TESTİ NEDİR NASIL YAPILIR? Weil Felix testi Riketsiyozların tanısında kullanılır.

NAT Yöntem onayı. Dr. A. Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

KENE KAYNAKLI ENSEFALİTLERDE LABORATUVAR TANI

Kış Sezonunda Görülen İnfluenza Virüsü Tipleri ve Tedavide Oseltamivir in Etkinliği

HIV/AIDS OLGULARINDA KIZAMIK, KIZAMIKÇIK, KABAKULAK VE SUÇİÇEĞİ SEROPREVALANSININ DEĞERLENDİRİLMESİ

TANIMLAR. Dr. Neriman AYDIN. Adnan Menderes Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

İMMUNOLOJİK TANI YÖNTEMLERİ

İNFLUENZA AŞISI:İŞE YARAMADI MI?

Hepatit B Virüs Testleri: Hepatit serolojisi, Hepatit markırları

Doç. Dr. Kenan MİDİLLİ İ.Ü. Cerrahpaşa Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

Aşılama Denetimi Prensipleri. Dr. Bart van Leerdam Çeviri: Polimed İlaç Teknik Servis Vet. Hek.. Demir Özdemir

HEMAGLÜTİNASYON TESTİ

Enterobacteriaceae Ġzolatlarında Karbapenemazların Saptanmasında Modifiye Hodge Testi ve Carba NP Testlerinin Karşılaştırılması

TÜRKĠYE DE ĠZOLE EDĠLEN ĠKĠ FARKLI TOXOPLASMA GONDII SUġUNDAN ÜRETĠLEN ADJUVANTE ERĠYĠK PROTEĠN AġILARININ UYARDIĞI ĠMMUN YANITIN KARġILAġTIRILMASI

CMV lab.tanı Hangi test, ne zaman, laboratuvar sonucunun klinik anlamı?

I. Analitik duyarlılık ve özgüllük II. Klinik duyarlılık ve özgüllük III. Kesinlik tekrarlanabilirlik IV. Doğruluk V. Doğrusallık (lineerite)

BİR-ONSEKİZ YAŞ GRUBUNDA KABAKULAK VİRÜS SEROPOZİTİFLİĞİ MUMPS VIRUS SEROPOSITIVITY IN SUBJECTS AGED 1-18 YEARS ÖZET SUMMARY GİRİŞ

Moleküler Testlerde Yöntem Geçerliliğinin Sınanması. Dr. Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

İnfluenza A (H1N1) pdm09 Tanısında Hızlı Antijen Testi ile RT-PCR Testinin Karşılaştırılması

BIR GRİP SEZONUNUN BAŞıNDA İLK OLGULARıN İRDELENMESİ

Domuz Gribi (H1N1v) Dr. A.Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji AD

Brusellozun serolojik tanısında yeni bir yöntem: İmmuncapture aglutinasyon testi

Uzm. Dr. Cahide Saçlıgil Kartal Yavuz Selim Devlet Hastanesi

Brusellozda laboratuvar tanı yöntemleri

hs-troponin T ve hs-troponin I Değerlerinin Farklı egfr Düzeylerinde Karşılaştırılması

IV. KLİMUD Kongresi, Kasım 2017, Antalya

ERİŞKİN HASTADA İNFLUENZAYI NASIL TANIRIM?

İNFLUENZADA KORUNMA. Uz. Dr. Öznur Ak KEAH

İMMUNİZASYON. Bir bireye bağışıklık kazandırma! Bireyin yaşı? İmmunolojik olarak erişkin mi? Maternal antikor? Konak antijene duyarlı mı? Sağlıklı mı?

Boğmaca aşısında güncel gelişmeler

Aşı İçeriği ve Ülkemize Uyumu

SAĞLIK ÇALIŞANLARININ ENFEKSİYON RİSKLERİ

İnfluenza Hastalık Yükü ve Aşıları. Dr. Funda YETKİN İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi Enfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

HEMAGLUTİNASYON (HA)

EPSTEIN-BARR VİRUS ENFEKSİYONLARI TANISINDA ELISA VE İMMUNOBLOT TESTLERİNİN KARŞILAŞTIRILMASI

HIV/AIDS ve Diğer Retrovirus İnfeksiyonları,laboratuvar tanısı ve epidemiyolojisi

D İ F T E R İ. toksoidinin (1200 Lf/mL, 3061 Lf/mg PN; Biken, Japan) 100µl si ile kaplanmış ve bir gece buzdolabında,

2009 AFYONKARAHİSAR ÖNSÖZ. Sonsuz saygı, sevgi ve teşekkürlerimi sunmayı borç bilirim.

Viral Hepatitler. Hepatit A Virus. Viral Hepatitler- Tarihsel Bakış. Hepatit Tipleri. Hepatit A Klinik Özellikler

Klinik Çalışanlarına Önerilen Sağlık Girişimleri

GERİATRİK HEMODİYALİZ HASTALARINDA KOMORBİDİTE VE PERFORMANS SKORLAMALARININ PROGNOSTİK ÖNEMİ; TEK MERKEZ DENEYİMİ

Böbrek Nakli Yapılan Çocuklarda Bağışıklanma Durumunun ve Aşı Yanıtlarının Değerlendirilmesi

Kronik Hepatit B'li Genç Hastalara Karaciğer Biyopsisi Hemen Yapılmalı mı?

Orta Doğu Solunum Sendromu Coronavirüs (MERS-CoV) İnfeksiyonu

Bebeklerde maternal kýzamýk antikorlarýnýn kaybolmasý

Batıkent 1 No lu Sağlık Ocağı nda Aylık Çocuklarda Tetanoz Toksoid IgG Antikor ve Koruyuculuk Düzeyleri


HEPATİT A TANI, TEDAVİ, KORUNMA

Hasta ve/veya enfekte materyal ile potansiyel teması olan tüm personel

KKKAH ve Aşı Çalışmaları. Prof. Dr. AYKUT ÖZDARENDELİ ERCİYES ÜNİVERSİTESİ AŞI ARAŞTIRMA VE GELİŞTİRME MERKEZİ

Enzimlerinin Saptanmasında

INFLUENZA. Dr Neşe DEMİRTÜRK. Kocatepe Üniversitesi Tıp Fakültesi Klinik Mikrobiyoloji ve İnfeksiyon Hastalıkları AD

Bruselloz tanılı hastalarda komplikasyonları öngörmede nötrofil/lenfosit oranı, trombosit/lenfosit oranı ve lenfosit/monosit oranının değeri

İNTERFERON GAMA SALINIM TESTLERİ. Süheyla SÜRÜCÜOĞLU

S A H A A R A Ş T I R M A S I

Akciğer hidatidozunun tanısında IHA, ELISA ve Western Blot testlerinin değerlendirilmesi

İnfluenza A VİROLOJİ-EPİDEMİYOLOJİ. Prof. Dr. Tamer ŞANLIDAĞ

SAĞLIK ÇALIŞANLARINDA BAĞIŞIKLAMA

Dokuz Ay - 8 Yaş Arası Çocuklarda Hepatit B Seroprevalansı ve Aşılanma Durumları

Dünyada ve Türkiyede Hepatit B ve Hepatit C Epidemiyolojisi. Dr Meral Sönmezoğlu Yeditepe Üniversitesi Hastanesi

IMMUN PEROKSİDAZ TESTİ (PEROXİDASE LİNKED ANTİBODY ASSAY-PLA)

Q HUMMASI İÇİN RİSK GRUPLARINDA COXIELLA BURNETII YE KARŞI OLUŞAN ANTİKORLARIN ELISA VE IFA TESTLERİ İLE SAPTANMASI

Türkiye'de İnfluenza Sezonunda Görülen Influenza A(H1N1)pdm09 Virüsünün Moleküler Karakterizasyonu

KRONİK HBV ENFEKSİYONLU HASTA TAKİBİNDE KANTİTATİF HBSAG TİTRESİNİN ETKİNLİĞİNİN DEĞERLENDİRİLMESİ

Anti-HLA Antikorlar ve Transplantasyon

CROSSMATCH ELISA YÖNTEMİ

KISA BİLDİRİ: BRUSELLOZUN TANISINDA BRUCELLACAPT TESTİNİN DEĞERİNİN ARAŞTIRILMASI

SİFİLİZ TANISINDA KULLANILAN SEROLOJİK TESTLER İÇİN AKIŞ ŞEMASININ OLUŞTURULMASI

IL28B genotip tayini kronik hepatit B hastalarında oral antiviral tedavi cevabını öngörmede kullanılabilir mi?

GEBELERDE AŞILAMA. Dr. Neşe DEMİRTÜRK Kocatepe Üniversitesi Tıp Fakültesi İnfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji AD, Afyonkarahisar.

Tüberkülozda Yeni Tanı Metodları (Quantiferon)

KONU 24A HEPATİT C. Tekin AKPOLAT, Cengiz UTAŞ

Piperasilin-Tazobaktam(TZP) a Bağlı Hematolojik İstenmeyen Etkiler

Trakya Üniversitesi Tıp Fakültesi, Halk Sağlığı Anabilim Dalı, Edirne.

VERİFİKASYON. Dr. Tijen ÖZACAR. Ege Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD - İZMİR

GLUTEN SENSİTİF ENTEROPATİ(ÇÖLYAK HASTALIĞI) TANISINDA NON- İNVAZİV TANI TESTLERİ İLE İNVAZİV TANI TESTLERİNİN KARŞILAŞTIRILMASI

P z o itif Nega g ti a f

Gebelerde Anti HIV Sonuçlarının Değerlendirilmesi

Emrah Salman, Zeynep Ceren Karahan Ankara Üniversitesi Tıp Fakültesi. Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

ANALİTİK YÖNTEMLERİN DEĞERLENDİRİLMESİ. Doç.Dr. Mustafa ALTINIŞIK ADÜTF Biyokimya AD 2004

Transkript:

İnfeksiyon Dergisi (Turkish Journal of Infection) 2005; 19 (1): 25-29 İNFLUENZA VİRUS AŞISI İLE AŞILANMIŞ BİREYLERDE ELISA İLE SEROKONVERSİYONUN GÖSTERİLMESİ ELISA FOR MONITORING SEROCONVERSION IN INDIVIDUALS VACCINATED WITH INFLUENZA VIRUS VACCINE Murat SAYAN 1 Sabahat GENÇ 2 Ayşe YÜCE 3 Eyüp Sabri UÇAN 2 Nuran YULUĞ 1 Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi, İzmir 1 Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı 2 Göğüs Hastalıkları Anabilim Dalı 3 İnfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı Anahtar Sözcükler: Influenza virus, Split Virion Aşı, serokonversiyon, ELISA, hemoglütinasyon inhibisyon testi Keywords: Influenza virus, Split Virion Vaccine, seroconversiyon, ELISA, hemagglutination inhibition test Geliş: 29 Temmuz 2004 Kabul: 13 Aralık 2004 ÖZET İnfluenza virusları, dünyada yaygın epidemilere yol açabilmekte ve solunum yolları kökenli hastalıklarda önemli mortalite ve morbidite nedeni olabilmektedir. Bundan dolayı aşılama, virusdan korunmak için en iyi yöntem olarak gösterilmektedir. Bu çalışmanın amacı, influenza virus aşılamasından sonra serokonversiyonun izlenmesinde ELISA nın yerini saptamaktır. Çalışmada, 1994-95 influenza mevsimi öncesinde, kronik obstrüktif akciğer hastalıklı ve astımlı 50 hasta, trivalan influenza aşısı ile aşılandı. Aylar içindeki antihemaglutinin antikorlarının değişimi ELISA ile izlendi ve bu yöntemin duyarlılık ve özgüllüğü hemaglutinasyon inhibisyon yöntemiyle karşılaştırıldı. IgG antikorlarının serokonversiyonu; altıncı ayda H 1N 1 subtipi için % 64, H 3N 2 subtipi için % 52, ve B tipi için %40 olarak saptandı ve ELISA nın duyarlılığı %76 ve özgüllüğü %88 olarak belirlendi. Aşılamadan altı ay sonra, antihemaglutinin IgG antikorlarının artışı istatistiksel olarak anlamlı bulundu (p<0.005). Sonuç olarak, aşılamanın, hastaların önemli bir kısmında, var olan hemaglutinasyon inhibisyon antikorlarını arttırdığı, ELISA nın zaman almayan ve göreceli olarak duyarlı ve özgül bir yöntem olduğu, serokonversiyonu ve infeksiyonu izlemede kullanılabileceği düşünülmektedir. SUMMARY Influenza viruses can cause worldwide epidemics and are important causes of mortality and morbidity due to pulmonary diseases. The best method of prevention is to vaccinate people each year before the influenza season. The purpose of this study was to evaluate ELISA in determining seroconversion following vaccination against influenza virus. Prior to 1994-95 influenza season, 50 patients suffering from chronic obstructive pulmonary diseases and asthma were vaccinated with trivalent influenza split virion vaccine. To detect seroconversion, antihemagglutinin IgA, IgM and IgG responses and their differences with time were followed with ELISA and sensitivity and specificity of ELISA were compared with hemagglutination inhibition assay. Seroconversions of IgG were found to be 52 % for H 3N 2, 64 % for H 1N 1, and 40 % for B virus in the 6th month. Sensitivity was 76 %, specificity was 88 % in inhouse ELISA. A significant increase in antihemagglutinin IgG antibodies after vaccination was determined at the end of 6 months (p<0.005). As a result, vaccination with influenza virus vaccine caused an increase in the percentage of patients having preventive HI antibody levels. As ELISA is not time-consuming and has considerable sensitivity and specificity, it may be used for detection of seroconversion in vaccinees as well as for follow-up of influenza infection in the community. 25

Sayan ve ark. GİRİŞ Serolojik bir yöntem olan hemaglutinasyon inhibisyon (HAI) testi ilk defa Hirst (1941) tarafından tanımlanmış ve Salk (1944) tarafından modifiye edilmiştir (1). Yöntem, kimi pratik problemler barındırmakta birlikte, sıklıkla influenzanın laboratuvar tanısında kullanılmaktadır. İnfluenza viruslarına duyarlı çeşitli canlılar, serumlarında testte yalancı pozitifliğe yol açacak ve yeni izolatların tanımlanmasını engelleyecek-α2 makroglobulin fraksiyonunda-nonspesifik inhibitörler içerirler. Ayrıca HAI yönteminde kullanılan eritrositler, aynı tür içinde farklı duyarlılığa sahip olabilmekte, diğer yandan testin değerlendirilmesindeki subjektif mekanizma hatalara yol açabilmektedir. Ancak yöntemin uygulama alanındaki basitliği, ekipman kolaylığı ve testin tekrarlanabilirliğinin yüksekliği önemli avantajları olarak göze çarpmaktadır (1, 2). Her yıl influenza ve onun komplikasyonlarından dünyada 20-40 bin arasında ölüm olmaktadır. Bu aşamada aşılama, influenza morbidite ve mortalitesini azaltmada en iyi yöntem olarak karşımıza çıkmaktadır (3). Türkiye de influenza virion aşısı ile aşılama geniş çaplı kullanım alanına sahip değildir. Öte yandan bu aşılamanın sonuçları ya da aşıya karşı oluşan koruyucu antikor yanıt düzeyleri yeterince bilinmemektedir. Araştırmada akciğer hastalıklı yaşlı bireylerde trivalan influenza split virion aşısına karşı serokonversiyonun gösterilmesi ve bu amaçla kullanılan HAI ve ELISA yöntemlerinin performans kriterleri açısından karşılaştırılması amaçlanmıştır. GEREÇ VE YÖNTEMLER Araştırma, Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Araştırma ve Uygulama Hastanesi Göğüs Hastalıkları Kliniği nde yatan, 40-75 yaş aralığında bulunan, kronik obstruktif akciğer hastalıklı (KOAH) ve astımlı 22 erkek ve 28 kadın hastada yapıldı. Hastalar trivalan influenza split virion aşısı ile (Vaxigrip - Pasteur Merieux Connaught, Fransa) (aşı içeriği: A/Shangdong/9/93(H 3N 2), A/Texas/36/91(H 1N 1), B/Panama/ 45/0) aşılandı. Hastalardan aşılama öncesi ile aşıdan 1 ve 6 ay sonra serum örnekleri toplandı, 10 µg/ml sodyum azit eklenerek -70 C da çalışma gününe kadar saklandı. Serum örnekleri HAI testine alınmadan önce nonspesifik inhibitörlerden arındırıldı ve bu amaçla önce tripsinize (5µg/µl tripsin ile 56 C da 30 dak. inkübasyon - Gurr tamponu, ph: 6.8-1/10 serum dilüsyonunda) edildi, ardından 4 C da hemadsorbsiyon işlemi uygulandı. Hemaglütinasyon inhibisyon testinde kullanmak üzere kardiyak delme ile tavuk eritrositleri elde edildi ve modifiye Alsever solüsyonunda (ph: 6.1) tutuldu. Eritrositler fosfat tamponu ile yıkandı (ph: 7.2) ve fotometrik özellikte standart bir süspansiyon hazırlandı (1, 4). İnfluenza virus hemaglutinin antijenleri, Ankara Refik Saydam Hıfzıssıhha Enstitü sünden sağlandı ve 4 C da saklandı. İnhibitörlerden arındırılmış serum örnekleri, yuvarlak tabanlı polistren mikrokuyucuklarda (Elkay Products Inc.- ABD) iki kat seri dilüsyona (1/10-1/1280) alındı. Testte hemaglutinin antijenleri dört hemaglutinasyon inhibisyon ünitesi kadar kullanıldı. Serum HAI titresi, hemaglutinasyonun tamamen önlendiği en yüksek serum dilüsyonu olarak belirlendi. Test sonuçlarının geçerliliği, negatif ve pozitif referans test serumlarının kontrol olarak kullanılması ile sağlandı. Tüm örnekler hem HAI hem de ELISA ile aynı zamanda incelendi. ELISA yönteminde düz tabanlı polistren mikrokuyucuklar (Elkay Products Inc.-ABD) hemaglutinin (10 µg/100 µl) antijenleri ile (karbonat tamponunda, ph: 9.6 / - 4 C bir gece inkübasyonda) kaplandı. Hasta serum örnekleri 1/100 dilüsyonda incelendi. Konjugat olarak anti-human IgG, IgA, IgM alkalen fosfataz (Orion Diagnostic - Espoo, Finlandiya) ve substrat olarak p-nitrofenil fosfat (Sigma Chemical Company- St. Louis, ABD) kullanıldı. Mikrokuyucukların fotometrik absorbansı 405 nm de (ELISA Reader; SLT Spectra ΙΙ -Kanada) elde edildi. ELISA ile rölatif antikor titrelerinin saptanabilmesi için referans serum kontrolleri kullanıldı [(Dünya Sağlık Örgütü standart serum örnekleri ile kalibre edildi (1/5-1/640 HAI titresi dilüsyonlarında)]. ELISA eşik değeri, çok sayıda negatif kontrol örneğinin test edilmesi ve absorbans ortalamasının 1 standart deviasyonunun alınması ile hesaplandı (4). İstatistiksel analiz Bu araştırmada veriler SPSS yazılımı (SPSS win. 6.0, Manchester, İngiltere, 1989-1993) ile analiz edildi. Bağımsız değişkenlerin saptanması için verilerin geometrik ve aritmetik ortalamaları hesaplandı. Ayrıca araştırmada karşılaştırılan test yöntemlerinin duyarlılık, özgüllük, pozitif prediktif değer, negatif prediktif değer ve etkinlik performansları belirlendi. 26 İnfeksiyon Dergisi (Turkish Journal of Infection)

İnfluenza virus aşısı ile serokonversiyon BULGULAR Antihemaglutinin antikorları 1/40 ve daha üzeri titrelerde koruyucu antikor düzeyi, HAI antikorlarında aşılama sonrası dört kat artış ise aşıya immun yanıt yani serokonversiyon olarak kabul edildi (1). Tablo 1 de hastalara ait antikor titreleri görülmektedir. Koruyucu antikor düzeyleri aşıdan bir ay sonra %100 oranda artmış ve altıncı ayda devam etmiştir. Her bir subtipe karşı oluşan IgA, IgM ve IgG tipi antikor yanıtları Tablo 2 de geometrik ortalama titreleri olarak verilmiştir. H 3N 2, H 1N 1 ve B virusuna karşı IgA düzeyleri aşılama sonrası birinci ayda artmış, ancak altıncı ayda azalmıştır (p<0.005). IgM yanıtında ise bu durum anlamlı bulunmamıştır (p>0.005). IgG antikor yanıtları H 3N 2 için birinci ve altıncı ayda, H 1N 1 için sadece altıncı ayda anlamlı olarak artmıştır (p<0.005). B virusuna karşı IgG yanıtı altıncı ayda azalmıştır. Aşılama sonrası IgG antikor yanıtlarının serokonversiyonu Tablo 3 te gösterilmiştir. Hastalarda H 3N 2 ve H 1N 1 subtiplerine karşı immünizasyon sırasıyla %52 ve %64 oranında gelişmiş, B suşunda bu oran %40 da kalmıştır. Aşı suşlarına karşı IgG yanıtları ELISA ile ölçülmüş ve HAI yöntemi altın standart alınarak duyarlılık, özgüllük, pozitif prediktif değer, negatif prediktif değer ve etkinlik performansları aşı öncesi ve bir ay sonrası olmak üzere karşılaştırılmıştır (Tablo 4). Tablo 1. Hastalarda varolan koruyucu HAI antikor yanıtları ve influenza aşılaması sonrasında oluşan serokonversiyon oranları Aşı sonrası koruyucu antikor düzeyleri (%)* Serokonversiyon** Aşı virusu Subtip Aşı öncesi 1. ay 6. ay 1. ay 6. ay A/Shangdong/9/93 H 3 N 2 26 56 66 36 48 A/Texas/36/91 H 1 N 1 40 86 82 58 62 B/Panama/45/90 36 62 80 16 48 HAI: Hemaglütinasyon inhibisyon * Koruyucu antikor düzeyi >1/40 ** Serokonversiyon: HAI antikor yanıtlarında aşı sonrası en az dört katlık artış Tablo 2. ELISA ile ölçülen IgA, IgM ve IgG antikor yanıtlarında geometrik ortalama titreleri Aşı virusu ELISA * Subtip Aylar IgA IgM IgG A/Shangdong/9/93 H 3N 2 0 27 27 112* 1 74* 60 313* 6 43 29 242* 0 33 24 194 A/Texas/36/91 H 1N 1 1 86* 42 324* 6 36 33 370* 0 9 34 73 B/Panama/45/90 1 103* 48 112 * ELISA da geometrik ortalama titreleri ve p< 0.005 6 24 38 97 Tablo 3. IgG antikor yanıtları yönünden ELISA da serokonversiyon oranları Serokonversiyon oranları (%)* Aşı virusu Subtip 1 ay 6 ay Toplam A/Shangdong/9/93 H 3N 2 28 24 52 A/Texas/36/91 H 1N 1 30 34 64 B/Panama/45/90 22 18 40 TARTIŞMA Bir influenza aşısının A ve B tipi İnfluenza viruslarından oluşması gerektiği 1940 lı yıllarda gösterilmiştir. Son yıllarda ise trivalan aşılar, 1978 den beri dolaşımda bulunan H 3N 2 ve H 1N 1 subtiplerini içermektedirler (5,6). Bu nedenle, bu çalışmada kullanılan aşı içeriğinde, H 2N 2 subtipi bulunmamaktadır. Çalışma grubu KOAH ve astımlı hastalardan oluşturuldu, çünkü influenza bu hastalıklarda semptomları arttıran Tablo 4. Altın standart HAI testi ile geliştirilen ELISA nın performans karşılaştırması Hasta sayısı (n) Frekans (%) HAI ELISA Subtip P a N b GP c GN YP YN D d Ö e PPD f NPD g E h H 3N 2 18 26 10 34 4 2 83 89 71 94 88 H 1N 1 29 19 11 30 4 5 69 88 73 85 82 B 8 26 6 37 5 2 75 88 54 94 86 a P: Pozitif b N: Negatif c GP: Gerçek pozitif, GN: Gerçek negatif, YP: Yalancı pozitif, YN: Yalancı negatif d D: Duyarlılık: GP/GP+YN x100, e Ö: Özgüllük: YN/YN+YPx100, f PPD: Pozitif prediktif değer: GP /GP+YPx100 g NPD: Negatif prediktif değer: GN/GN+YNx100, h E: Etkinlik: GP+GN/GP+YP+YN+GN x100 Cilt 19, Sayı 1, Ocak 2005 27

Sayan ve ark. tetikleyici faktörlerden biridir. Hastalar influenzanın komplikasyonlarına daha duyarlıdır ve bu nedenle korunma amaçlı aşılama yapılmalı, koruyucu antikor düzeyleri oluşturulmalıdır (7, 8). Bu çalışmada, olgularda aşılama sonrasında serokonversiyon gelişti ve hemaglütinasyon inhibisyon antikor ünitelerinde en az dört katlık artışlar saptandı. Olguların yaklaşık yarısında aşı sonrası serokonversiyon oluşurken en iyi immünizasyon H 1N 1 subtipinde oluştu (Tablo 1). Araştırmalarda serokonversiyon oranları oldukça farklı çıkmaktadır. Şenol ve ark. (9) serokonversiyon oranlarını aşı sonrası birinci ayda H 3N 2 için %27, H 1N 1 için %29 ve B virus tipi için %34 olarak saptamışlardır. Powers ve Belshe (10) 17 yaşlı hastada aşıya serokonversiyonu H 3N 2 için %29 ve H 1N 1 subtipi için %18 oranında belirlemişlerdir. Nötralizan antihemaglütinin antikorları influenzanın serolojik tanısında oldukça değerlidir (1, 6, 11). Bu amaçla sıklıkla HAI testi kullanılmaktadır. Bu yöntem basit, hesaplı ve özellikle İnfluenza A viruslarına karşı oldukça duyarlı fakat B tipi İnfluenza viruslarına karşı daha az duyarlılıktadır (11). Öte yandan, serumda bulunan nonspesifik inhibitörler yöntemin duyarlılığını etkiler ve inhibitörleri nötralize etmek test süresini iki güne çıkarır (1, 2). ELISA, HAI yönteminden daha spesifik, duyarlı ve hızlı bulunmaktadır. Yöntem aynı zamanda nötralizan karakterdeki antihemaglütinin ve nöraminidaz antikorları ile nötralizan olmayan matriks ve nükleoprotein antikorlarını da saptamaktadır (12-14). ELISA da tek bir serum dilüsyon örneği ile çalışmak ve antikorları kantite etmek mümkündür. Serum inhibitörleri bunu etkileyememektedirler. İnfluenza da lokal immün yanıt ve IgA antikorları önem kazanmaktadır çünkü infeksiyon bir üst solunum yolu infeksiyonudur. ELISA ile IgA ve izotiplerini göstermek mümkün olabilmektedir (2, 11-15). Çalışmada, IgG geometrik ortalama titreleri IgA ve IgM den daha büyük bulunmuştur (Tablo 2). Bu, korunmada önemlidir ve altı aydan sonra dahi saptanabilmiştir. Olgularda IgG serokonversiyonu ile yeterli immünizasyon yanıtı elde edilmiş ve subtipler arasında en yüksek oran H 1N 1 subtipinde belirlenmiştir (Tablo 3). Araştırmada ELISA ve HAI yöntemleri ile benzer serokonversiyon oranları belirlenmiştir. Glück ve ark. (16) 126 yaşlı bireyde ELISA ile serokonversiyonu A virusu için % 59, B virusu için % 44 olarak saptamışlardır. Synder ve ark. (14) çalışmalarında H 3N 2 için % 59, H 1N 1 için % 83 serokonversiyon oranı bildirmişlerdir. ELISA da duyarlılık, IgG ile belirlenmiş ve en yüksek %83 ile H 3N 2 subtipinde, en düşük %69 ile H 1N 1 subtipinde saptanmıştır (Tablo 4). Özgüllük, A ve B viruslarında benzer oranlarda yaklaşık %88 olarak bulunmuştur. ELISA, negatif örnekleri yüksek ve benzer oranda negatif bulurken, pozitif örnekleri beklenenin üzerinde ve değişken oranda pozitif bulmuştur. Yazarların yapımı olan ELISA zaman alıcı değildir ve hatırı sayılır duyarlılık ve özgüllüktedir. Bu nedenle aşılama sonrası serokonversiyon saptamasında ve toplumdaki influenza infeksiyonunun takibinde kullanılabilir. Kimi hastaların aşı öncesinde düşükte olsa koruyucu antikor düzeylerine sahip olması onların aynı influenza virusları ile daha önceden karşılaştıklarını ya da farklı influenza viruslarına rağmen çapraz reaktif antikorlar ürettiklerini göstermektedir. Aşı öncesinde var olan koruyucu HAI antikorları, H 1N 1 subtipi ve B virus tipine göre daha az oranda H 3N 2 subtipinde saptanmıştır (Tablo 1). Aşılama ile bu varolan koruyucu HAI antikorlarının oranı yukarılara doğru çekilebilmiştir. Bu bulgu, aşılamanın etkinliğini göstermektedir. Aşılama yaşlı ve hasta bireyler için etkin ve gereklidir. Çünkü virusun hemaglütinin ve nöraminidaz antijenlerine karşı koruyucu nitelikte antikor yazarlarının oluşmasını sağlamaktadır (17,18). Kullanılan aşının içeriğindeki 15 µg hemaglütinin antijeni HAI antikor üretimini yeterince tetiklemeyebilir. Bu nedenle aşılamanın ardından daha yüksek nötralizan antikor düzeyleri amaçlanıyorsa antijen konsantrasyonunun arttırılması sağlanabilir ya da ikinci bir aşı dozu uygulaması tercih edilebilir. Ayrıca aşı içeriğine adjuvan eklenmesi de düşünülebilir. Astım ve KOAH gibi kronik solunum yolu hastaları ve diğer risk gruplarının aşılanması yaşam kalitelerini artırmakta, hastane yatışlarını ve infeksiyon epizotlarını azaltıp tedavi giderlerini düşürmektedir. Ancak yaşlı bireylerde immünite bir yıldan az sürebilmektedir. Bu nedenle aşı her yıl tekrarlanmalı ya da bir ay arayla ikinci bir doz uygulaması yapılmalıdır. TEŞEKKÜR Hemaglütinin antijenlerini ve referans kontrollerini bizlere sağladığı için Ankara Refik Saydam Hıfzısıhha Enstitüsü ne teşekkür ederiz. 28 İnfeksiyon Dergisi (Turkish Journal of Infection)

İnfluenza virus aşısı ile serokonversiyon KAYNAKLAR 1. Anonymous. Advanced Laboratory Techniques for Influenza Diagnosis. Immunology Series. No: 6. Procedural Guides. Atlanta: U.S. Department of Health Education and Welfare, Public Health Service, 1975: 26-8. 2. Benne CA, Kraaijeveld CA, van Strijp JAG, et al. Interactions of surfactant protein A with Influenza A viruses: Binding and neutralization. J Infect Dis 1995; 171: 335-41. 3. Berktaş MB. Influenza vaccination. Mikrobiyol Bült 1994; 28: 392-403. 4. Deutscher MP. Guide to protein purification. Abelson JN, Simon MI, eds. Methods in Enzimology. San Diego, CA: Academic Press Inc. Harcourt Brace & Co, 1990; 182: 57-459. 5. Belshe RB, Swierkosz EM, Anderson EL, Newman FK, Nugent SL, Maassab HF. Immunization of infants and young children with live attenuated trivalan COPD - recombinant Influenza A/H 1 N 1, H 3 N 2 and B vaccine. J Infect Dis 1992; 165: 727-32. 6. Murphy BR, Clements ML, Tierney EL, Robert EB, Stienberg J, Chanock RM. Dose response of Influenza A/Washington/897/80 (HN) avian - human reassortant virus in adult volunters. J Infect Dis 1985; 152: 225-9. 7. Heilman C, Montagne JR. Influenza: Status and prospects for its prevention, therapy and control. Pediatr Clin North Am 1990; 37: 669-81. 8. Karen L, Kristin L, Gregory A, Robert A, Pahrm D. Side effects of influenza vaccine in the elderly people. JAMA 1992; 5: 617-9. 9. Şenol E, Yetkin A, Artuk Ç, Aktaş F, Ulutan F. Evaluation of the efficacy of influenza vaccination in health care professionals. İnfek Derg 1996; 10: 21-4. 10. Powers DC, Belshe RB. Vaccine-induced antibodies to heterologous Influenza A H 1 N 1 viruses: Effects of aging and original antigenic sin. J Infect Dis 1994; 169: 1125-9. 11. Harman MW, Kendal AP. Influenza viruses. In: Balows A, Hausler WS, Herrmann K, Isenberg HD, Shadony HJ, eds. Manual of Clinical Microbiology. 5th ed. Washington, DC: American Society for Microbiology, 1991: 868-77. 12. Jawetz E, Melnick J, Adelberg EA, Brooks GF, Butel JS, Ornston LN. Medical Microbiology. 18th ed. East Norwalk, CT: Prentince-Hall, Appleton and Lange, 1989: 467-78. 13. Leonardi GP, Leib H, Birkhead GS, Smith C, Costello P, Conron W. Comparison of rapid detection methods for Influenza A virus and their value in health - care management of institutionalized geriatric patients. J Clin Microbiol 1994; 32: 70-4. 14. Snyder MH, Banks S, Murphy BR. Determination of antibody response to Influenza virus surface glycoproteins by kinetic enzyme-linked immunosorbent assay. J Infect Dis 1988; 26: 2034-40. 15. Heilman C. Influenza: Status and prospects for its prevention, therapy and control. Pediatr Clin North Am 1990; 37: 669-81. 16. Glück R, Mischler R, Finkel B, Que JU, Scarpa B, Cryz Jr SJ. Immunogenicity of new virosome Influenza vaccine in elderly people. Lancet 1994; 344: 160-3. 17. Callan RJ, Hartmann FA, West SEH, Hinshaw VS. Cleavage of Influenza A virus H 1 hemagglutinin by swine respiratory bacterial proteases. J Virol 1997; 71: 7579-85. 18. Kodihalli S, Haynes JR, Robinson HL, Webster RG. Cross-protection among lethal H 5 N 2 Influenza viruses induced by DNA vaccine to the hemagglutinin. J Virol 1997; 71: 3391-6. İLETİŞİM Dr. Murat SAYAN Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı İZMİR e-posta: sayanmurat@hotmail.com Cilt 19, Sayı 1, Ocak 2005 29