KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ LABORATUVAR TANISI

Benzer belgeler
KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ HASTALIĞI (KKKA) VE KARADENİZ BÖLGESİ NDEKİ DURUMU

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ (KKKA) Muğla Sıtkı Koçman Üniversitesi Tıp Fakültesi Eğitim ve Araştırma Hastanesi Enfeksiyon Kontrol Komitesi 2015

KENE KAYNAKLI ENSEFALİTLERDE LABORATUVAR TANI

VİRUS HASTALIKLARINDA TANI YÖNTEMLERİ

Vektör kaynaklı Viral Enfeksiyonlar. Koray Ergünay

Kırım Kongo Kanamalı Ateşi Virusunun Tüm Vücut Sıvılarında Saçılım Süresinin ve Serumda Antikor yanıtının moleküler ve serolojik olarak takibi

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ

Dünyada ve Türkiye de İnfluenza Epidemiyolojisi. Dr. Nurbanu Sezak Atatürk EAH Enfeksiyon Hst. ve Kln. Mikrobiyoloji Kliniği Kasım 2015

Maymun Çiçek Virüsü (Monkeypox) VEYSEL TAHİROĞLU

Viral Kanamalı Grup Etkenleri ve MERS Yeni Bir Afet mi? Uzm. Dr. Murat ONGAR Ankara EAH Acil Tıp Kliniği

Mikrobiyolojide Moleküler Tanı Yöntemleri. Dr.Tuncer ÖZEKİNCİ Dicle Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji A.D

TOKSOPLAZMA İNFEKSİYONUNUN LABORATUVAR TANISI UZM.DR.CENGİZ UZUN ALMAN HASTANESİ

Arboviruslar. Prof.Dr.Ali Ağaçfidan İstanbul Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

TLERDE SEROLOJİK/MOLEK HANGİ İNCELEME?) SAPTANMASI

Resim1A: Kırım Kongo Hemorajik hastalığının görüldüğü coğrafya

2008 YILI KIRIM-KONGO KANAMALI ATEŞİ OLGULARININ LABORATUVAR TANISINDA PCR VE ELISA-IgM SONUÇLARININ İRDELENMESİ

VİRAL ENFEKSİYONLAR VE KORUNMA. Yrd. Doç. Dr. Banu KAŞKATEPE

KIRIM-KONGO KANAMALI ATEŞİ

Ebola virüsü İstanbul'a geldi!

7.EKMUD Kongresi,Antalya-Türkiye GÜNAYDIN

Kırım Kongo Kanamalı Ateşi Virusu

VİROLOJİYE GİRİŞ. Dr. Sibel AK

Halis Akalın, Nesrin Kebabcı, Bekir Çelebi, Selçuk Kılıç, Mustafa Vural, Ülkü Tırpan, Sibel Yorulmaz Göktaş, Melda Sınırtaş, Güher Göral

HIV/AIDS ve Diğer Retrovirus İnfeksiyonları,laboratuvar tanısı ve epidemiyolojisi

EPSTEIN-BARR VİRUS ENFEKSİYONLARI TANISINDA ELISA VE İMMUNOBLOT TESTLERİNİN KARŞILAŞTIRILMASI

Gebelerde Rubella (Kızamıkçık) Yrd.Doç.Dr.Çiğdem Kader

İMMUNOLOJİK TANI YÖNTEMLERİ

Kırım-Kongo Kanamalı Ateş hastalarında tip I (α, β) interferon ve viral yük düzeyleri ile klinik seyir arasındaki ilişkinin araştırılması

IV. KLİMUD Kongresi, Kasım 2017, Antalya

Hepatit B Virüs Testleri: Hepatit serolojisi, Hepatit markırları

KIRIM-KONGO KANAMALI ATEŞİ

TEKİRDAĞ HALK SAĞLIĞI MÜDÜRLÜĞÜ

Gebelerde Toxoplasma gondii Seropozitifliğinin Değerlendirilmesinde İstenen Testlerin Önerilen Tanı Algoritmasına Uygunluğunun Değerlendirilmesi

Viral gastroenteritlerin laboratuvar tanısı

CLOSTRIDIUM DIFFICILE ENFEKSİYONUNDA GLUTAMAT DEHİDROGENAZ VE TOKSİN A/B TESTLERİNİN TANI DEĞERİ VE MALİYET ETKİNLİĞİ

Hepatit C Virüsü: Tanıda Serolojik ve Moleküler Yöntemlerin Yeri. Üner Kayabaş İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi Malatya

Gebelikte İnfeksiyonların Değerlendirilmesi

VİRAL TANI KİTLERİ (GFJ-480)

HIV TANISINDA YENİLİKLER

WEİL-FELİX TESTİ NEDİR NASIL YAPILIR? Weil Felix testi Riketsiyozların tanısında kullanılır.

T.C. SAĞLIK BAKANLIĞI Temel Sağlık Hizmetleri Genel Müdürlüğü

Prediktör Testler ve Sıradışı Serolojik Profiller. Dr. Dilara İnan Isparta

Brusellozda laboratuvar tanı yöntemleri

Yasemin Budama Kılınç1, Rabia Çakır Koç1, Sevim Meşe2, Selim Badur2,3

Kırım Kongo Kanamalı Ateş hastalarında ağırlık ve ölüm riskinin tahmininde plazma cell-free DNA düzeyinin önemi

ANKARA BÖLGESİNDE KENE TEMASI ÖYKÜSÜ OLMAYAN İKİ KIRIM-KONGO KANAMALI ATEŞİ OLGUSU

İklim ve vektör bağımlı güncel viral enfeksiyonlar

PANDEMİK İNFLUENZA H1N1 TANISINDA LABORATUVARIN YERİ VE DÜNYA SAĞLIK ÖRGÜTÜ ALGORİTMASI DOÇ.DR.MUSTAFA ERTEK ANKARA

Klinik Mikrobiyoloji de Enzimli İmmün Deney Enzyme Immuno Assay. Dr. Dilek Çolak

DANG HUMMASI. Yrd. Doç.Dr. Banu Kaşkatepe

ARBOVİRUSLAR DR.TUNCER ÖZEKİNCİ TIBBI MİKROBİYOLOJİ A.D

SARS (SEVERE ACUTE RESPİRATORY SYNDROME) CİDDİ AKUT SOLUNUM YETMEZLİĞİ SENDROMU

SINIR DEĞERLER NE ÖNERİLİR? Düzen Laboratuvarlar Grubu

SAĞLIK ÇALIŞANLARININ ENFEKSİYON RİSKLERİ

İstanbul daki El Ayak Ağız Hastalığı Vakalarında Coxsackievirus A6 ve Coxsackievirus A16 nın Saptanması

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ

Gebelik ve Enfeksiyonlar. Prof.Dr. Levent GÖRENEK

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ

HANTAVİRÜSLER: Neredeydik, ne oldu? Dr. M. Ali ÖKTEM

KORUMA. Doç. Dr. Levent GÖRENEK GATA İnfeksiyon Hastalıkları ve Kl. Mik. AD.

KKKAH ve Aşı Çalışmaları. Prof. Dr. AYKUT ÖZDARENDELİ ERCİYES ÜNİVERSİTESİ AŞI ARAŞTIRMA VE GELİŞTİRME MERKEZİ

SANTRAL SİNİR SİSTEMİ ENFEKSİYONU ETKENİ ARBOVİRÜSLER

İNFLUENZA AŞISI:İŞE YARAMADI MI?

Rhabdoviridae. Dr.Tuncer ÖZEKİNCİ

TRANSFÜZYON MERKEZİ HASTALARDA KULLANILAN MİKROBİYOLOJİK TARAMA TESTLERİ TALİMATI

Anti-HIV Pozitif Bulunan Hastada Kesin Tanı Algoritması. Doç. Dr. Kenan Midilli İ.Ü. Cerrahpaşa Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ

ULUSAL MĠKROBĠYOLOJĠ STANDARTLARI (UMS)

Viral Hepatitler. Hepatit A Virus. Viral Hepatitler- Tarihsel Bakış. Hepatit Tipleri. Hepatit A Klinik Özellikler

CMV lab.tanı Hangi test, ne zaman, laboratuvar sonucunun klinik anlamı?

Su Çiçeği. Suçiçeği Nedir?

IV. Türk Tıp Dünyası Kurultayı, Ekim 2017, İstanbul

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ

DÜNYADA VE TÜRKİYEDE KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ EPİDEMİYOLOJİSİ

Klinik Mikrobiyoloji Laboratuarında Validasyon ve Verifikasyon Kursu 12 Kasım 2011 Cumartesi Salon C (BUNIN SALONU) Kursun Amacı:

Tatarcık Ateşi Doç. Dr. Üner Kayabaş İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi İnfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji Anabilim Dalı Malatya

KIRIM-KONGO KANAMALI ATEŞİ

Malatya'da Bir Toplu Konut İnşaatı Alanındaki İşçilerde Tatarcık Ateşi Salgını: Epidemiyolojik, Klinik Özellikler ve Salgın Kontrolü Çalışmaları

TÜRKĠYE DE KUDUZ VE YÜRÜTÜLEN ÇALIġMALAR

Isırıkla İlgili Literatür İncelemesi

Türkiye nin mevcut HPAI Durumu. o Türkiye, de OIE ye HPAI yönünden arilik bildirimini yapmıştır.

HEPATİT B AŞISI HEPATİT B AŞISI HEPATİT B AŞISI KİMLERE YAPILIR? HEPATİT B RİSKİ OLAN KİŞİLER

Sunum İçeriği Dünyada Kırım Kongo Kanamalı Ateşi (KKKA) Epidemiyolojisi Türkiye Halk Sağlığı Genel Müdürlüğü (THSGM) Çalışmaları KKKA Türkiye verileri

Travmalı hastaya müdahale eden sağlık çalışanları, hasta kanı ve diğer vücut salgıları ile çalışma ortamında karşılaşma riski bulunan diğer sağlık

HANTAVİRUSLAR VE TÜRKİYE DEKİ EPİDEMİYOLOJİK DURUM

Türkiye de Arboviral İnfeksiyonların Laboratuvar Tanısı. Uzm. Dr. Dilek Yağcı Çağlayık 28 Mart 2015, Antalya

IV. KLİMUD Kongresi, Kasım 2017, Antalya

ve KARŞILAŞILAN SORUNLAR

KIRIM-KONGO KANAMALI ATEŞİ

GASTROENTERİT YAPAN VİRUSLAR VE ENFEKSİYON OLUŞTURMA MEKANİZMALARI

Hazırlayan: Fadime Kaya Acıbadem Adana Hastanesi Enfeksiyon Kontrol Hemşiresi Hazırlanma Tarihi:

HASTANE ENFEKSİYONLARININ EPİDEMİYOLOJİSİ. Yrd. Doç. Dr. Müjde ERYILMAZ

MİKROBİYOLOJİK TARAMA TEST ÇALIŞILMA ESASLARI VE BAĞIŞÇI POZİTİFLİĞİNE YAKLAŞIM

EBOLA VİRÜS HASTALIĞI. Doç. Dr. Gönül ŞENGÖZ. 27 Ocak 2015 İstanbul Sağlık Müdürlüğü

Yrd. Doç. Dr. Koray Ergünay MD PhD Hacettepe Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD. Viroloji Ünitesi

Hollanda da Avian Influenza nın İzleme (Monitoring) ve Sürveyansı. Ruth Bouwstra DVM PhD GD Animal Health

HIV/AIDS epidemisinde neler değişti?

Transkript:

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ LABORATUVAR TANISI Dr. Etem ÖZKAYA Refik Saydam Hıfzıssıhha Merkezi Başkanlığı Viroloji Referans ve Araştırma Laboratuvarı Dr. Mustafa Aydın ÇEVİK anısına II. Zoonotik Hastalıklar Sempozyumu, ANKARA

KIRIM KONGO KANAMALI ATEŞİ (KKKA) İlk olarak 1944 yılında Kırım da görülmüş ve Kırım kanamalı ateşi adı verilmiştir. Daha sonra aynı belirtilerle 1956 yılında Kongo da görülen hastalığa Kongo ateşi adı verilmiştir. 1969 yılında her iki hastalığın da aynı olduğunun anlaşılması üzerine hastalık Kırım-Kongo Kanamalı Ateşi adıyla anılmaya başlamıştır.

Bulaş ve mortalite KKHA virüsü, insanlara kene ısırığı ile veya infekte hayvan ya da insanların; kan, vücut sıvıları veya diğer infekte dokularının direkt teması yoluyla bulaşır. KKHA virüsü belirli bölgede bulunan keneler ile-insanlar-keneler arasında dolaşımdadır. Literatürde çok sayıda nozokomiyal bulaş tanımlanmıştır Mortalite %3-30 arasında değişmektedir

Enfeksiyon hayvanlarda, insanlara nazaran daha yaygındır. Ancak, herhangi bir belirti göstermeden seyretmektedir. İnsanlarda ise sporadik vakalar veya epidemiler şeklinde görülebilmektedir.

Virüs özellikleri Bugün için tanımlanmış olan viral hemorajik ateş etkeni olan virüsler; - Bunyaviridae, (KKHA nin de etkeni) - Filoviridae (Marburg virüs ve Ebola virüs), - Arenaviridae (Lassa virüs ve Junin, Machupo, Sabia ve Guanarito virüs), - Rift Valley fever virüs (RVFV) ve Hantavirüs) ve - Flaviviridae (yellow fever virüs ve dengue virüs) gibi RNA virüsleridir.

KKHA virüsü, - Bunyaviridae ailesi-nairovirüs grubunda - 100 nm büyüklüğünde, helikal kapsidli, zarflı ve tek iplikli RNA 3 segment içerir (M,S ve L). - Dezenfektanlara ve çevre şartlarına nispeten dayanıksız, konakçı dışında yaşayamaz, - Kuru havada (56 C'de 30 dakikada), - Hipoklorit ve %2 gluteraldehit gibi dezenfektanlarla ve - UV ile kolaylıkla inaktive olur.

Virolojik tanı Klasik yöntemler olarak virüs kültürü, elektron mikroskopisi (EM), antijen ve antikor saptama yöntemleri kullanılmaktadır. Her yöntemin avantaj ve dezavantajları vardır. Hastalığın klinik seyrine göre uygulanması gereken laboratuvar yöntemleri hastalığın evrelerine göre seçilir;

KKHA enfeksiyonunun dört evresi vardır; - 1-İnkübasyon Dönemi: Kene tarafından ısırılma ve virüsün alınmasını izleyen genellikle 1-3 gün; en fazla 9 gün olabilmektedir. Enfekte kan, vücut sıvısı veya diğer dokulara doğrudan temas sonucu bulaşmalarda 5-6 gün, en fazla ise 13 gün olabilmektedir. - 2-Prehemorajik Dönem: Ateşin (39-41ºC), kas ağrısının, baş ağrısı ve baş dönmesinin aniden ortaya çıkması ile karakterizedir. Bu evre ortalama 3 gün sürer (1-7 gün). - 3-Hemorajik Dönem: Kısa, gnl 2-3 gün sürer. - 4-Konvelesan Dönem: Hemorajik dönemi atlatan hastalarda hastalığın başlangıcından 10-20 gün sonra başlar.

KKK Ateşinin klinik ve laboratuvar seyri

a) Virüs kültürü: - duyarlı bir yöntem, biyogüvenlik-4 düzeyindeki laboratuvar koşulları altında yapılması gerekli - Hastalığın ilk günlerinde (ilk beş gün) kan ve dokulardan alınan örneklerden virüs izolasyonu yapılabilir - Vero E6, BHK-21, SW 13, LLC-MK2, CER gibi hücre kültürleri kullanılabilmekte ve sonrasında immünfloresans yöntemi ile antijen varlığı gösterilmektedir. - Ayrıca yeni doğan fareler virüs konsantrasyonunun düşük olduğu örneklerde virüs izolasyonu amacı ile kullanılabilmektedir.

b) Elektron Mikroskopi: Hızlı bir yöntem olmasına rağmen iyi donanımlı araştırma laboratuvarı koşullarını gerektirir.

c) Serolojik Tanı: EIA (enzim immün assay) yada indirek immünfloresans gibi antikor saptama yöntemleri güvenilir olmasına rağmen hastalığın erken dönemlerinde uygun değildir. Antikor saptamada EIA testinin indirek immünfloresans testinden daha duyarlı olduğuna dair çalışmalar mevcuttur.

KKKAV IgG ve IgM antikorları en hızlı olarak hastalığın 5-7. gününden itibaren ELISA ile saptanabilmektedir. IgM'ler 4 ay, IgG'ler titrede azalma olur ve 5 yıla kadar saptanabilir Özgül antikorlar kanda belirlenmeden önce ölen hastalarda bu yöntemle tanı konulamayabilir. Bu durumda tanı, özellikle hastalığın ilk 5 gününde alınan kan ve doku örneklerinden virüs izolasyonu, spesifik antijenin tespiti ve RT-PCR ile konur.

Hastalığı tekrar geçiren (reenfeksiyon) olmaması nedeni ile antikorların ömür boyu koruyucu olduğu söylenebilir.

d) Moleküler Yöntemler-1: KKKA virüsü RNA'sının saptanmasında RT-PCR (reverse transkriptaz- polimeraz chain reaction) yöntemi enfeksiyonun erken dönemlerinde kan ve doku örneklerinden en hızlı ve en duyarlı yöntem olarak kullanılmaktadır. Fakat ayrı bir cdna sentez aşaması olması ve takiben PCR ürünlerinin agar jel analizi gerekliliği ve bazı vakalarda ikinci tur amplifikasyon gerektirmesi gibi durumlar nedeniyle zaman alıcı olarak değerlendirilmektedir.

KKKA-Amplification Plots

d) Moleküler Yöntemler-2: RT-PCR yönteminde çoğaltılan viral hedefin miktarının saptanamaması ve testler sırasında çok sayıdaki örnek nedeniyle artmış bir kontaminasyon riski vardır. Real-time PCR yöntemi ise nispeten daha kolay, daha fazla örnek çalışılmasına uygun olması nedeniyle son zamanlarda daha yaygın olarak kullanılmaktadır. Refik Saydam Hıfzıssıhha Merkez Başkanlığı, Viroloji Ref. Ve Araş. Laboratuvarında, Real- Time PCR yöntemi kullanılmaktadır.

e) Gen dizilim analizi (sequencing) : Epidemiyolojik olarak dolaşımdaki KKKA virüslerinin genetik benzerliklerinin ortaya konulması yanı sıra; Tanıda kullanılan moleküler yöntemlerde hedef bölgelerdeki mutasyonlara bağlı olabilecek genetik değişiklikler ve dolayısıyla kullanılan primer-probların doğruluğunun teyidini sağlar.

Türkiye de durum Fark edilen İlk olgu Mayıs 2002 de Tokat ta Ateş, baş ağrısı, kas ağrısı ve kanama şikayetleri ile hastalığın KKKA olduğu anlaşıldı Daha önceki yıllarda da hastalığın var olduğu tahmin ediliyor

Numune Alınması ve Gönderilmesi Hastalardan genellikle birden fazla serum örneği alınmakta ve laboratuvara gönderilmektedir. Hastanın ilk başvurduğu bulunduğu ildeki hastaneden alınan serum örneğini takiben durumu daha ağır seyreden hastaların sevk edildiği KKKA takibi yapılan merkezlerde 2. 3. kan örneği alınmakta ve İl Sağlık Müdürlükleri aracılığı ile RSHMB, Viroloji Ref. Araş. Lab. gelmektedir. Hasta bilgi formu eksiksiz olarak doldurulmalıdır

KKKA LABORATUVAR TANISI- RSHMB, Viroloji Ref.& Araş. Lab. Virüs kültürü Elektron mikroskopi Moleküler yöntemler * Antikor aranması* Gen dizilim analizi* Antijen aranması *RSHMB Viroloji Lab. da çalışılanlar

1- Virüs kültürü Bulaş riskinin yüksek olması nedeni ile biyogüvenlik seviyesi 4 olan laboratuvarlarda virüs kültürü ve izolasyonu önerilmektedir. Kültür için vireminin olduğu ilk bir hafta içinde kan numunesi alınması önerilir. Laboratuvarımızda KKKAV kültürü yapılmamaktadır. Fakat biyogüvenlik seviye-3 laboratuvar ihalesi yapılmış olup çalışmalar devam etmektedir.

2- Moleküler yöntemler Real-time PCR ile virüs RNA sının gösterilmesi - Viremik dönem (0. günden 12.-13. güne kadar uzayabilir - Örnek: Hasta serumu Kolon veya manuel ekstraksiyon yöntemi ile RNA elde edilir In-house Real-time PCR yöntemi uygulanır Metod tek aşamalı olup, ABI 7700 (GATA Viroloji) yada Strategene (RSHMB Viroloji) cihazı kullanılarak 40 döngüde gerçekleştirilir.

3. Antikor aranması-i Antikor ELISA ve IFA yöntemleri ile araştırılabilir. Ticari olarak satışa sunulmuş CE belgeli kit üretimi henüz yoktur. Laboratuvarımızda CDC (ABD) den temin edilen KKKA virusu antijenleri ile in-house ELISA yöntemiyle IgG ve IgM antikorları taranabilmektedir.

3. Antikor aranması-ii İlk alınan serum örneğinden Real-Time PCR çalışılmakta, 5. günü geçmiş örneklerde ise ELISA-IgM araştırılmaktadır. İlk 5 günde alınmış olmasına rağmen Real time PCR yöntemi ile Negatif çıkan hastalarda ELISA-IgM testi yapılmaktadır.

3. Antikor aranması-iii ELISA-IgG testi ise bir toplulukta hastalığa karşı kazanılmış antikor yanıtının saptanması için serosürveyans çalışmalarında kullanılabilen bir yöntemdir. Ayrıca tanısı şüpheli hastalarda ileri dönemde test yapılabilir.

3. Antikor aranması-iv IFA yöntemi ile KKKAV-IgM ve IgG saptanabilmesi için RSHMB ile Euroimmun firması ile yürütülen proje çalışması vardır. Kit geliştirilebilmesi için öncelikle KKKAV antijenlerinin elde edilme gerekliliği vardır - Hücre kültüründe virüs izolasyonu yada - Diğer moleküler yöntemler

2006 RSHMB KKKA LABORATUVARI POZİTİF VAKALARIN AYLARA GöRE DAGILIMI Numunesi Gelen Vaka Sayısı Çalışılan IgM Sayısı IgM Pozitif IgM Pozitiflik Oranı Çalışılan PCR Sayısı PCR Pozitif PCR Pozitiflik Oranı Pozitif Vaka Sayısı Pozitifli k Oranı 2006/AYLAR OCAK 3 2 0,00 1 0,00 0 0,00 ŞUBAT 0 0 0,00 0 0,00 0 0,00 MART 6 6 4 66,67 6 2 33,33 5 83,33 NİSAN 32 34 21 61,76 24 4 16,67 25 78,13 MAYIS 102 114 60 52,63 3 1 33,33 68 66,67 HAZİRAN 292 329 90 27,36 233 89 38,20 167 57,19 TEMMUZ 428 565 139 24,60 333 36 10,81 179 41,82 AĞUSTOS 227 322 44 13,66 15 0,00 45 19,82 EYLÜL 57 79 6 7,59 0 0,00 8 14,04 EKİM 17 19 0,00 0 0,00 0 0,00 KASIM 17 21 0,00 0 0,00 0 0,00 ARALIK 5 6 0,00 0 0,00 0 0,00 TOPLAM 2006 1186 1470 364 24,76 615 132 21,46 497 41,91

2006 KKKA VAKALARI- AYLARA GöRE DAGILIMI 450 Numunesi Gelen Vaka Sayıs 428 IgM Pozitif PCR Pozitif Igm+PCR Poz itif 400 350 300 292 250 227 200 150 139 100 102 90 89 60 50 0 3 0 0 0 6 4 2 1 32 21 4 3 1 15 36 4 44 57 6 17 17 5 OCAK ŞUBAT MART NİSAN MAYIS AZİRAN EMMUZ ĞUSTOS EYLÜL EKİM KASIM ARALIK

2007/AYLAR 2007 YILI RSHMB KKKA LABORATUVARI IgM ve PCR POZITIFLERIN DAGILIMI Gelen Numune Sayısı Numunesi Gelen Vaka Sayısı Çalışılan IgM Sayısı VAKA SAYISINA GÖRE ELISA IgM PCR TOPLAM EXITUS IgM Pozitif IgM Pozitiflik Oranı OCAK 3 3 3 3 0 0,00 3 0 0,00 0 0 0,00 0 0,00 ŞUBAT 4 4 3 4 0 0,00 4 0 0,00 0 0 0,00 0 0,00 MART 12 12 9 9 2 22,22 9 0 0,00 0 2 22,22 0 0,00 NİSAN 46 46 33 33 16 48,48 33 3 9,09 3 16 48,48 0 0,00 MAYIS 343 343 222 222 126 56,76 222 28 12,61 24 130 58,56 8 3,60 HAZİRAN 647 5 642 412 412 226 54,85 412 110 26,70 89 247 59,95 9 2,18 TEMMUZ 634 12 622 390 389 187 48,07 383 153 39,95 112 228 58,46 10 2,56 AĞUSTOS 418 4 414 289 289 67 23,18 279 65 23,30 38 94 32,53 0 0,00 EYLÜL 192 80 112 76 76 5 6,58 76 16 21,05 4 17 22,37 0 0,00 EKİM 19 19 17 16 1 6,25 16 4 25,00 1 4 23,53 0 0,00 KASIM 9 9 8 6 0 0,00 8 0 0,00 0 0 0,00 0 0,00 ARALIK 9 9 7 6 0 0,00 7 4 57,14 0 4 57,14 0 0,00 Çalışılan PCR Sayısı PCR Pozitif PCR Pozitiflik Oranı Igm+PCR Pozitif Pozitif Vaka Sayısı Pozitiflik Oranı SAYISI ORANI TOPLAM 2007 2336 101 2235 1469 1453 630 43,36 1437 379 26,37 271 742 50,51 27 1,84

2007 KKKA VAKALARI- AYLARA GöRE DAGILIMI Numunesi gelen vaka IgM Pozitif PCR pozitif IgM+PCR poz. Pozitif vaka say. Exitus say. Ocak 3 0 0 0 0 0 şubat 3 0 0 0 0 0 Mart 9 2 0 0 2 0 Nisan 33 16 3 3 16 0 Mayıs 222 126 28 24 130 8 Haziran 412 226 110 89 247 9 Temmuz 390 187 153 112 228 10 Ağustos 289 67 65 38 94 0 Eylül 76 5 16 4 17 0 Ekim 17 1 4 1 4 0 Kasım 8 0 0 0 0 0 Aralık 7 0 4 0 4 0 TOPLAM 1469 630 379 271 742 27

2007 KKKA VAKALARI- AYLARA GöRE DAGILIMI

2008/AYLAR OCAK 2008 YILI RSHMB KKKA LABORATUVARI IgM ve PCR POZITIFLERIN DAGILIMI Gele n Num une Sayı sı 2008 YILI CCHF VERİLERİ GELEN NUMUNE SAYISINA GÖRE VAKA SAYISINA GÖRE Ça lış m ay a El ve riş li Ol m ay an N u m un e Çalış maya Elver işli Num une Çalı şıla n IgM Sayı sı IgM Pozi tif Çalı şıla n PCR Sayı sı PCR Pozi tif Num unes i Gele n Vaka Sayı sı Çalı şıla n IgM Sayı sı ELISA IgM PCR TOPLAM EXITUS ŞUBAT 3 3 3 3 0 0,00 3 0 0,00 0 0,00 0,00 MART 15 15 1 14 14 0 0,00 14 4 28,57 1 7,14 1 0,00 NİSAN 88 88 85 17 77 27 65 62 6 9,68 65 35 53,85 33 50,77 3 3 4,62 MAYIS 575 7 568 413 194 395 197 349 195 55 28,21 349 215 61,60 237 67,91 10 8 2,29 HAZİRAN 1232 12 1220 882 317 853 405 744 410 64 15,61 742 364 49,06 452 60,75 28 22 2,96 TEMMUZ 1601 16 1585 1193 377 1148 428 977 594 75 12,63 971 361 37,18 486 49,74 16 8 0,82 AĞUSTOS 865 4 861 734 173 633 129 535 418 49 11,72 532 90 16,92 175 32,71 5 1 0,19 EYLÜL 136 136 89 13 81 15 91 50 1 2,00 76 12 15,79 16 17,58 1 0,00 IgM Po zitif IgM Pozitifli k Oranı Çalı şıla n PCR Sayı sı PCR Pozit if PCR Pozitifli k Oranı Igm ve/ veya PCR Poziti f Pozitifl ik Oranı BİL DİRİ Mİ YAP ILA N EX SAY ISI EX VA KA SA YIS I ORA NI TOPLAM 2008 4515 39 4476 3396 1091 3187 1202 2778 1746 250 14,32 2752 1081 39,28 1400 50,40 64 42 1,51

2006 2007 2008 KIRIM KONGO VERİLERİ 5000 4515 4500 4000 3500 3000 2336 2778 2500 2000 1500 1000 1645 1186 497 1469 738 1400 500 0 2006 2007 2008 GELEN NUMUNE S. VAKA S. POZİTİF VAKA S.

2006-2007-2008 Vaka Artışı ve Vaka Pozitiflik Oranları 2006 2007 2008 2008 in 2006 ya Göre Vaka Artış Oranları (%) GELEN NUMUNE SAYISI 1645 2336 4515 274,5 VAKA SAYISI 1186 1469 2778 234,2 POZİTİF VAKA S. 497 738 1400 281,7 POZİTİFLİK ORANI 41,9 50,2 50,4

Sonuçlar Her yıl laboratuvara gelen örnek sayılarında artış olmaktadır - RSHMB Bölge müdürlüklerinde aynı sistemlerin kurularak yükün dağıtılması hedeflenmiştir. Vakalara ait sonuçların hızlı olarak hastanelere ulaştırılabilmesi için posta ile resmi sonuç bildiriminin yanında e-posta yoluyla sonuç bildirilmektedir Sonuçlar; RSHMB İl Sağlık Md.leri Hastane

Gen dizilim analizi Ülkemizde 2006, 2007 ve 2008 yıllarında farklı illerden saptanan 53 adet KKKA virüsünün gen dizilim analizleri yapılarak (RSHMB Viroloji-AÜ Vet. Viroloji) ülkemize komşuluk eden veya etmeyen diğer ülkelerdeki KKKA virüsleri ile olan genetik benzerlikleri de ortaya konmuş durumdadır. Sonuç: KKKAV lerinin real-time PCR testlerindeki olası hedef bölge farklılıklarının saptanması için gen dizilim analizi yapılması gerekliliği vardır.

RSHMB VİROLOJİ LAB. ÇALIŞANLARI ADINA TEŞEKKÜRLER