1.5 Kalite Kontrol Bölüm Fiziksel Kalite Kriterleri Bölüm Mikrobiyolojik Kalite Kriterleri Mikrobiyal Kontaminasyon

Benzer belgeler
Numuneden 10 gr tartılır, 90 ml BPW üzerine eklenerek stomacher de (stomacher yoksa elde) homojen hale getirilir. Bu, 1/10 luk ilk dilusyondur.

VERİFİKASYON. Dr. Tijen ÖZACAR. Ege Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD - İZMİR

Tüberküloz laboratuvarında kalite kontrol

Envirocheck Contact plates; Yüzey Testi için 09.01

Ġ.Ü. MÜHENDĠSLĠK FAKÜLTESĠ ÇEVRE MÜHENDĠSLĠĞĠ BÖLÜMÜ MĠKROORGANĠZMALARIN ASEPTĠK TRANSFERĠ VE ÇĠZGĠ EKĠM

GIDA MİKROBİYOLOJİSİ LABORATUVAR UYGULAMASI

Sıvı Besiyeri Kullanılan Yöntemler 1

SU ÜRÜNLERİİŞLEME TESİSİNDEKİ MİKROBİYAL FLORANIN DEĞİŞİMİNDE TİCARİ DEZENFEKTANLARIN ETKİSİNİN ARAŞTIRILMASI. Aysu BESLER

M50 otomatik tanımlama Ve duyarlılık testi

Sonuçların Gönderildiği Son Tarihi : 10 Ekim 2014

Bacillus cereus ve Analiz Yöntemleri

Ġ.Ü. MÜHENDĠSLĠK FAKÜLTESĠ ÇEVRE MÜHENDĠSLĠĞĠ BÖLÜMÜ

Gıdaların Mikrobiyolojik Analizi (05) 07. Ekim. A. Kadir Halkman Giriş Analiz Yöntemi Seçimi

I. Analitik duyarlılık ve özgüllük II. Klinik duyarlılık ve özgüllük III. Kesinlik tekrarlanabilirlik IV. Doğruluk V. Doğrusallık (lineerite)

MAYIS 2012 S0501&S0502

Membran Filtrasyon ile Suların n Mikrobiyolojik Analizi. Prof. Dr. Kadir HALKMAN Ankara Üniversitesi,

Laboratuar ortamındaki kullanımı

TİTCK/ DESTEK VE LABORATUVAR HİZMETLERİ BAŞKAN YARDIMCILIĞI/ ANALİZ VE KONTROL LABORATUVAR DAİRESİ BAŞKANLIĞI KALİTE KONTROL PROSEDÜRÜ PR17/KYB

ÇOKLU TÜP FERMANTASYON YÖNTEMİ İLE TOPLAM KOLİFORM TAYİNİ. Koliform Bakteri Grubunun Tanımı

Mikrobiyal Gelişim. Jenerasyon süresi. Bakterilerde üreme eğrisi. Örneğin; (optimum koşullar altında) 10/5/2015

Katı Besiyeri Kullanılan Yöntemler

VERİFİKASYON (SEROLOJİ, MOLEKÜLER TESTLER)

Mikrobiyolojide Ölçüm Belirsizliği

7. BÖLÜM MİKROBİYAL GELİŞİM

SANİTER GIDA-ÇEVRE BİLİMİ LTD.ŞTİ.

Enfeksiyon odaklarından izole edilen Gram negatif ve Gram pozitif bakterilerde antimikrobiyal duyarlılık sonuçları

ÖZEL İSTEK - ANALİZ RAPORU

Listeria monocytogenes in Asit Dirençli Türlerinin Benzalkonyum Klorür Direnci ve Biyofilm Oluşumu. Emel ÜNAL TURHAN, Karin Metselaar, Tjakko Abee

YTÜ Çevre Mühendisliği Bölümü Çevre Mikrobiyolojisi 1 Laboratuarı BESİYERİ HAZIRLAMA

TEKNİK ŞARTNAME. Ürünün çalışması için gerekli(üretici firmanın önerdiği agar ve brothların hepsi) besiyerleri

Poisson Dağılımı Özellikleri ve Olasılıkların Hesaplanması

T.C. SAĞLIK BAKANLIĞI Verem Savaşı Daire Başkanlığı

TÜRKİYE İLAÇ VE TIBBİ CİHAZ KURUMU KOZMETIK ÜRÜNLERIN MIKROBIYOLOJIK KONTROLÜNE İLIŞKIN KILAVUZ

Tüketime Sunulan Çeşitli Gıda Gruplarının Bacillus cereus ile Kontaminasyonu, Korelasyonu ve Halk Sağlığı Üzerine Etkilerinin Araştırılması 1

Biyosidal Ürünlerin Mikrobiyolojik Analizlerinde Karşılaşılan Genel Sorunlar

GRANÜL MERCK BESİYERLERİ

Ġ.Ü. MÜHENDĠSLĠK FAKÜLTESĠ ÇEVRE MÜHENDĠSLĠĞĠ BÖLÜMÜ

EYLÜL 2011 S0485&S0486

Toplam alkalinite (CaCO3)

Su Mikrobiyolojisi 02

En Muhtemel Sayı (EMS) Yöntemi ( 3 lü EMS)

Clostridium perfringens Analizi (Kaynak 2) 1

Rahim ağzı kanseri hücreleri doku kültürü mikroskopik görüntüsü.

Klinik Mikrobiyoloji Testlerinde Doğrulama (verifikasyon) ve Geçerli Kılma (validasyon)

DOĞAL MĠNERALLĠ SULARIN ĠNSAN SAĞLIĞINA UYGUNLUĞUNUN MĠKROBĠYOLOJĠK YÖNDEN DEĞERLENDĠRĠLMESĠ

MİKROBİYOLOJİ LABORATUVARINDA UYULMASI GEREKEN KURALLAR

İÇİNDEKİLER BÖLÜM 1: MİKROBİYOLOJİYE GİRİŞ...1 BÖLÜM 2: MİKROORGANİZMALARIN MORFOLOJİLERİ.13 BÖLÜM 3: MİKROORGANİZMALARIN HÜCRE YAPILARI...

07. Mikroorganizma Analiz Yöntemleri 1

İzolasyon ve İdentifikasyon

SALMONELLA ARANMASI. a. GENEL ÖZELLİKLERİ

(Değişik:RG-15/12/ ) Ek 1. Kimyasal Özellikler Parametre Analiz Aralığı Birim

EYLÜL 2010 S0461&S0462

MAIA Pesticide MultiTest

Akreditasyon Sertifikası Eki (Sayfa 1/5) Akreditasyon Kapsamı

NAT Yöntem onayı. Dr. A. Arzu Sayıner Dokuz Eylül Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

Bimes Biyomedikal Sistemler ve Sağlık Hizmetleri Tic. Ltd. Şti Çetin Emeç Bulvarı 6. Cad. 64/ A.Öveçler ANKARA Tel: (0 312) Fax: (0

Farmasötik Preparatların Mikrobiyolojik Analizleri

Deney süresince tüketilen (kullanılan) = 65 ppm tüketilmiştir. Bu hacimce ppm dir. ppm i mg/m 3 e dönüştürürsek,

DİCLE ÜNİVERSİTESİ TIP FAKÜLTESİ DÖNEM I HÜCRE BİLİMLERİ 2 KOMİTESİ HÜCRE KÜLTÜRÜ ve TEKNOLOJİSİ Doç.Dr. Engin DEVECİ

GIDALARDA SALMONELLA ARANMASI (RAPIDCHEK SELECT SALMONELLA)

Yrd.Doç.Dr. Serkan Kemal Büyükünal. İstanbul Arel Üniversitesi Sağlık Bilimleri Yüksekokulu Beslenme ve Diyetetik Bölümü

ÖZEL İSTEK - ANALİZ RAPORU

GIDA KAYNAKLI HASTALIKLAR. Gıda orijinli hastalıklar gıda zehirlenmesi gıda enfeksiyonu olarak 2 ana gruba ayrılır.

PROSEDÜR İLKELERİ VE AÇIKLAMASI

Katı Besiyerinde Toplam Mezofil Aerob Bakteri Sayımı

VOGES PROSKAUER TESTİ

Hatice YILDIRAN. Gıda Mühendisi BURDUR İL MÜDÜRLÜĞÜ

03. En Muhtemel Sayı (EMS) Yöntemi (5 li EMS) EMS Yönteminde Dilüsyon Kavramı

LABORATUAR UYGULAMA SERİSİ-3 (MİKROBİYOLOJİK ANALİZLER 1)

COSMİNG LABORATUVAR. Kozmetiğin Uzmanı. Türkiye nin Akredite Kozmetik Analiz Laboratuvarı.

Doğru sayım yapabilmek için numuneyi tekrar sulandırmanızı tavsiye ederiz.

YÖNETMELĐK. k) Mesul müdür: Teknik işler ve havuzun uygun şekilde işletilmesinden sorumlu kimya veya sağlık eğitimi almış, en az lise mezunu kişiyi,

HİJYEN VE SANİTASYON KONTROL NUMUNELERİ

Alicyclobacillus 1. A. Kadir Halkman 2

02. Gıda Patojenlerinin Analizi (Standart Yöntemler)

Enzimlerinin Saptanmasında

Analiz Süresi: C'de 48 saat

Mikobakteriyoloji Laboratuvarı Sorular - Sorunlar

BÜYÜKBAŞ YETİŞTİRİCİLİĞİNDE MİKROBİYOLOJİK UYGULAMALAR

ANTİFUNGAL DİRENÇ ve ANTİFUNGAL DUYARLILIK TESTLERİ

Maksimum. Gıda Güvenliği

Laboratuvarda Tularemi Örnekleriyle Çalışma Rehberi

STANDARDİZASYON KURUMLARI VE TÜRKİYE

MSÜ DE STERİLİZASYONUN KONTROLÜ

Bacillus cereus 'un Standart Analiz Yöntemi 1

HEMAGLUTİNASYON (HA)

Bornova Vet.Kont.Arst.Enst.

Yöntem ve Test Seçimine Yaklaşım. Dr. Alpay Özbek Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji AD. Dokuz Eylül Üni. Tıp Fak. İZMİR

Akreditasyon Sertifikası Eki (Sayfa 1/7) Akreditasyon Kapsamı

Çalışma Ortamında Kişisel Maruziyet ve Ortam Ölçümleri

RTA JEL / PZR Saflaştırma Kiti

ANTİBİYOTİK DUYARLILIK TEST SİSTEMLERİNİN VERİFİKASYONU

KÜLTÜR STANDART ÇALIŞMA PROSEDÖRÜ

Analiz Yöntemleri Koliform Bakteriler ve E. coli (Kaynak 2) 1

TÜBERKÜLOZ LABORATUVARI TEST REHBERİ

AÇIKÖĞRETİM FAKÜLTESİ ÖĞRETİM YILI UZAKTAN EĞİTİM ÖNLİSANS PROGRAMLARI DERS PLANI GIDA KALİTE KONTROLÜ VE ANALİZİ ÖNLİSANS PROGRAMI

Genel İdentifikasyon Testleri 1

E.COLI /KOLİFORM İDENTİFİKASYONU VE KÜLTiVASYONU İÇİN (TÜPTE BESİYERİ)

Uzm. Bio. Zinnet OĞUZ 4 Kasım 2014 ANTALYA

GIDA LABORATUVARLARI Yılı Eğitim Programı

Transkript:

1.5 Kalite Kontrol Günümüzde gıda mikrobiyolojisi laboratuarlarında yaygın olarak ticari dehidre formülasyonlardan hazırlanan besiyerleri veya kullanıma hazır besiyerleri kullanılmaktadır. Kullanıma hazır besiyerlerinin kalite kontrolleri için kullanıcı laboratuvarın sorumlulukları Bölüm 1.3 de verilmiştir. Dehidre formülasyonlardan hazırlanan besiyerleri için bu bölümde verilen yarı-kantitatif ve kalitatif kontrol metotları yeterlidir. Kantitatif kontrol metotlarının dehidre besiyeri veya kullanıma hazır besiyeri üreticileri tarafından uygulanması zorunludur. Laboratuvarların bir besiyerini veya farklı marka bir besiyerini ilk kez kullanacaklarında kantitatif kontrol metotlarını kullanmaları önerilmektedir. Laboratuvarda hazırlanan her bir parti besiyerinin (Aynı zaman diliminde hazırlanmış aynı kod ile tanımlanmış besiyeri) bu bölümde verilen kalite kriterlerine uygunluğu değerlendirilmelidir. Kalite kriterlerini sağlamayan besiyeri partisi kullanılmamalıdır. 1.5.1 Fiziksel Kalite Kriterleri Besiyerlerinin ph, hacim (Diluentler), besiyeri kalınlığı (Petrideki besiyerleri), renk, berraklık (Sıvı besiyerleri) ve jel stabilitesi (Agarlı besiyerleri) kontrol edilmelidir. ph ve hacim kontrolü Bölüm 1.2 de detaylı olarak verilmiştir. 1.5.2 Mikrobiyolojik Kalite Kriterleri 1.5.2.1 Mikrobiyal Kontaminasyon Hazırlanan tüm besiyeri partileri kullanılmadan önce uygun koşullar altında inkübasyon yöntemi ile mikrobiyolojik kontaminasyon yönünden değerlendirilmelidirler. Laboratuvarların besiyerlerinin sterilite kontrollerine yönelik örnekleme planı ve kabul kriterleri Örnekleme planı ve kabul kriterleri bir besiyeri partisinin büyüklüğüne (petri/tüp/şişe sayısı) göre belirlenebilir. Küçük besiyeri partilerinin (<100 petri/tüp/şişe) kontaminasyon kontrolü için partiyi temsilen seçilen 1 adet örnek test edilmelidir. Test edilen örneklerden bir tanesinde mikrobiyolojik gelişme olması durumunda besiyeri partisi kullanılmamalıdır. Büyük partiler için ISO 2859 standardında tanımlanan iki aşamalı örnekleme yöntemi kullanılabilir. Bu yöntemde parti büyüklüğüne bağlı olarak örnek sayıları ve kontamine örnekler için kabul ve red seviyeleri belirlenmelidir. İlk örnek grubunda kontamine örneklerin sayısı kabul ve red seviyesi arasında olduğu takdirde ikinci örnek grubundaki kontamine örnek sayısına göre karar verilebilir. Her iki örnekleme grubundaki toplam kontamine örnek sayısının red kriterini aşması durumunda parti kullanılmaz. Küf ve maya sayımında kullanılan besiyerlerinin sterilite kontrolü amacı ile 25 C de en az 48 saat inkübe edilmelidir. Diğer besiyerleri ise 37 C de en az 18 saat inkübe edilmelidirler. Bazı sıvı besiyerleri, özellikle opak olanlar, inkübasyon sonunda sterilitenin teyidi için selektif olmayan agarlı bir besiyerine inokülasyon gerektirebilir. 1.5.2.2 Koloni Morfolojileri Diferansiyel ve identifikasyon besiyerlerinde hedef mikroorganizmaların fizyolojik ve biyokimyasal karakteristiklerine bağlı olarak beklenen koloni morfolojilerini göstermesi gerekmektedir. Bazı besiyerlerinde genellikle hedef mikroorganizma ile aynı tür, cins veya familyaya ait hedef dışı mikroorganizmalar farklı koloni morfolojileri ile hedef mikroorganizmalardan ayırt edilebilir. Besiyerlerinin bu ayırt edici özelliği Spesifiklik (Specificity) olarak isimlendirilmektedir. Örneğin BP agar koagülaz negatif Stafilakoklar için seçici değildir. Koagülaz negatif Stafilakoklar, hedef mikroorganizmalar olan koagülaz pozitif Stafilakoklardan koloni morfolojisi ile ayırt edilebilirler. Besiyerlerinin koloni morfolojileri 1.5.2.3 Verimlilik ve Seçicilik başlığı altında verilen kontroller esnasında değerlendirilebilir. 1.5.2.3 Verimlilik ve Seçicilik Verimlilik (Productivity) besiyerinde hedef mikroorganizmanın gelişme durumuna yönelik bir kalite kontrol kriteridir. Seçicilik ise seçici besiyerlerinin hedef dışı mikroorganizmaların gelişmesini baskılama gücüdür. Her iki 1

kalite kontrol kriteri kantitatif, yarı-kantitatif ve kalitatif olarak üç farklı metot ile değerlendirilebilir. Katı ve sıvı besiyerleri için kontrol metotları farklıdır. Katı Besiyerleri için Metotlar Kantitatif metot Verimlilik kontrolü için hedef mikroorganizma süspansiyonundan test edilen besiyerine ve referans besiyerine inokülasyon yapılır. Referans besiyeri selektif olmayan bir besiyeridir. Bakterilere yönelik besiyerlerinin kontrolünde referans besiyeri olarak Tryptone Soya Agar (TSA), küf ve mayalara yönelik besiyerleri için Sabouraud Dextrose Agar (SDA) kullanılabilir. Rutin uygulamalarda inokülasyon için dökme petri yöntemi kullanılan besiyerlerinin testlerinde dökme petri yöntemi kullanılabilir. Test için her iki besiyerinden birden çok petri kullanılabilir. İdeal olarak inkübasyon sonunda referans besiyeri petrilerinde toplam koloni sayısı 100 ün üzerinde Verimlilik, besiyerlerindeki koloni sayıları ile hesaplanan verimlilik oranı (Productivity Rate, P R ) ile değerlendirilir. P R = N S / N O Bu formülde N S test edilen besiyeri petrilerindeki toplam koloni sayısı, N O ise referans besiyeri petrilerindeki toplam koloni sayısıdır. Seçici olmayan besiyerleri için (Ör., Plate Count Agar) P R değeri 0,7 den büyük Seçici besiyerlerinin P R değeri ise 0,5 den büyük Seçici besiyerlerinin seçiciliği uygun hedef dışı mikroorganizmanın selektif olmayan sıvı besiyerindeki 18-24 saatlik kültüründen hazırlanan ondalık dilusyonlar ile değerlendirilebilir. Test edilen besiyeri ve referans besiyerindeki koloni sayıları ile seçicilik faktörü (Selectivity Factor, S F ) hesaplanır. S F = D O D S Bu formülde D O referans besiyerinde en az 10 koloni gözlenen en yüksek dilusyon, D S ise test edilen besiyerinde referans besiyeri ile yakın sayıda (>10) koloni gözlenen en yüksek dilusyondur. S F, D O ve D S logaritmik olarak ifade edilmelidir. Seçicilik faktörünün hesaplanmasına yönelik bir örnek de Tablo verilmiştir. Seçici besiyerleri için SF en 2 Tablo 1.2 BP agar ın Escherichia coli (ATCC 25922) ile gerçekleştirilen seçicilik kontrolü sonuçları Dilusyonlar ve koloni sayıları Besiyeri 10-1 10-2 10-3 10-4 10-5 10-6 10-7 10-8 TSA (Referans besiyeri) SKF* SKF 55 5 BP agar (Test besiyeri) 120 13 1 - - - - - * Sayılamayacak kadar fazla Tablo 1.2 de verilen koloni sayılarına göre D O 7 (10-7 ), D S ise 2 (10-2 ) dir. Bu örnekte S F 5 dir. Yarı kantitatif metot Katı besiyerlerinin verimlilikleri ve seçicilikleri Ekometri tekniği ile yarı kantitatif olarak değerlendirilebilir. Bu amaçla petri kutusundaki besiyeri hedef veya hedef dışı mikroorganizmanın selektif olmayan sıvı besiyerindeki 18-24 saatlik kültürü (10 7-10 8 kob/ml) ile inoküle edilir. Rutin uygulamalarda dökme petri yöntemi için kullanılan besiyerleri de önceden petriye dökülerek bu yöntem ile değerlendirilebilirler. İnokülasyon 1 µl lik öze kullanılarak Şekil 1 de verilen hatlara göre yapılmalıdır. Öze mikroorganizma kültürüne daldırılır ve agar yüzeyi ile 20-30 açı yapacak şekilde A bölgesinde paralel 4 hat halinde inokülasyon yapılır. Daha sonra öze yeniden mikroorganizma kültürüne daldırılmaksızın B ve C bölgesi hatları oluşturulur ve işlem D bölgesindeki tek hat ile sonlandırılır. Bu işlemde özenin sabit basınç ve hız ile kullanılması önemlidir. Ayrıca mikroorganizma kültürüne daldırılan özede fazla sıvı kalmamasına ve hava kabarcığı oluşmamasına dikkat edilmelidir. 2

Test edilen besiyeri için metot ile tanımlanan sıcaklık ve sürede inkübasyon sonunda her bir hattaki gelişme değerlendirilir. Hattın yarısından uzun bir bölümünde koloni gözlendiği takdirde 1 puan olarak değerlendirilir. Bu gelişme kriterini sağlamayan hatlara puan verilmez. Elde edilen toplam puan Gelişme indeksi (G I ) olarak isimlendirilir. Bu durumda Ekometri tekniğinde en yüksek G I değeri 16 dır. Selektif besiyerlerinde hedef mikroorganizma için G I değeri 6 dan yüksek Selektif olmayan besiyerleri için daha yüksek G I değerleri limit olarak kabul edilebilir. Selektif besiyerlerinde hedef dışı mikroorganizma kısmen veya tamamen inhibe Şekil 1.2 Ekometri tekniğinde inokülasyon hatları Kalitatif metot Bu metot yalnızca görsel değerlendirmeye dayalıdır. Petri kutusundaki besiyeri hedef mikroorganizmanın selektif olmayan sıvı besiyerindeki 18-24 saatlik kültürü (10 7-10 8 kob/ml) ile inoküle edilir. Rutin uygulamalarda dökme petri yöntemi için kullanılan besiyerleri de bu yöntem ile değerlendirilebilirler. İnokülasyon 1 µl lik öze kullanılarak yapılmalıdır. Öze mikroorganizma kültürüne daldırılır düz hatlar halinde inokülasyon yapılır. Bu metotta aynı petriye inokülasyon hatları birbirleri ile kesişmediği sürece farklı mikroorganizmalar inoküle edilebilir. Test edilen besiyeri için metot ile tanımlanan sıcaklık ve sürede inkübasyon sonunda petrilerdeki gelişme değerlendirilir. Gelişme gözlenmeyen petriler 0 puan, zayıf gelişme gözlenen petriler 1 puan ve iyi gelişme gözlenen petriler 2 puan olarak değerlendirilir. Hedef mikroorganizma için kabul kriteri 2 puandır. Selektif besiyerlerinde hedef dışı mikroorganizma kısmen veya tamamen inhibe olmalıdır (0 veya 1 puan). Sıvı Besiyerleri için Metotlar Kantitatif metot Verimlilik kontrolü için hedef mikroorganizma süspansiyonundan test edilen besiyerine ve referans besiyerine inokülasyon yapılır. Bakterilere yönelik besiyerlerinin kontrolünde referans besiyeri olarak Tryptone Soya Broth (TSB), küf ve mayalara yönelik besiyerleri içinse Sabouraud Dextrose Broth (SDB) kullanılabilir. Test edilen ve referans besiyerleri hedef mikroorganizma ile 10-100 kob/10 ml düzeyinde inoküle edilir ve metot ile tanımlanan sıcaklıkta ve sürede inkübe edilir. İnkübasyon sonunda doğrudan besiyerlerinden ve dilusyonlarından seçici olmayan katı besiyerlerine inokülasyon yapılır ve test edilen mikroorganizma için uygun sıcaklıkta ve sürede inkübe edilir. İnkübasyon sonunda petrilerdeki koloniler sayılır ve verimlilik oranı (P R ) katı besiyerleri için verilen formül ile hesaplanır. Elde edilen P R değeri 0,1 den büyük Seçici besiyerlerinin seçicilik kontrolü için test edilen besiyeri ve referans besiyeri uygun hedef dışı mikroorganizma ile >1000 kob/10 ml düzeyinde kontamine edilmelidirler. Test edilen ve referans 3

besiyerlerinin metot ile tanımlanan sıcaklıkta ve sürede inkübasyonunu takiben doğrudan besiyerlerinden ve dilusyonlarından seçici olmayan katı besiyerine inokülasyon yapılır. İnoküle edilen petriler kullanılan mikroorganizma için uygun sıcaklıkta ve sürede inkübe edilir. İnkübasyon sonunda petrilerdeki koloniler sayılır ve seçicilik faktörü (S F ) katı besiyerleri için verilen formül ile hesaplanır. Elde edilen S F değeri 2 den büyük Referans besiyeri kullanılmadığı takdirde, test edilen sıvı besiyerinin verimliliği inkübasyon sonunda selektif olmayan katı besiyeri üzerinde saptanan mikroorganizma sayısı ile değerlendirilebilir. Bu durumda besiyerinde hedef mikroorganizma sayısı 10 6 kob/ml nin üzerinde Seçici besiyerleri için hedef dışı mikroorganizma sayısı ise 10 4 kob/ml nin altında Diluentlerin kontrolü diğer sıvı besiyerlerinden farklıdır. Bu amaçla diluent uygun mikroorgamizma (Ör., Escherichia coli ATCC 25922) kültürü ile 100-1000 kob/10ml düzeyinde kontamine edildikten sonra oda sıcaklığında 45 d bekletilir. Bu sürenin başında ve sonunda mikroorganizma sayısı selektif olmayan katı besiyeri kullanılarak belirlenir. 45 d sonunda elde edilen mikroorganizma sayısı, başlangıçta elde edilen mikroorganizma sayısından ±%50 nin üzerinde farklı olmamalıdır. Yarı kantitatif metot Verimlilik kontrolü için test edilen besiyeri hedef mikroorganizma ile 10-100 kob/10 ml düzeyinde kontamine edilir. Test edilen besiyeri seçici bir besiyeri ise seçicilik kontrolü amacıyla hedef dışı mikroorganizma ile >1000 kob/10ml düzeyinde kontamine edilmelidir. Kontaminasyonu takiben besiyerleri metot ile tanımlanan sıcaklıkta ve sürede inkübe edilirler. İnkübasyondan sonra 10 µl lik öze kullanılarak verimlilik testi için seçici bir katı besiyerine ve seçicilik testi için seçici olmayan bir katı besiyerine inokülasyon yapılır. İnoküle edilen petriler kullanılan mikroorganizma için uygun sıcaklıkta ve sürede inkübe edilir. Kabul edilebilir bir verimlilik için İnkübasyon sonunda seçici besiyerinde en az 10 hedef mikroorganizma kolonisi gözlenmelidir. Kabul edilebilir bir seçicilik için seçici olmayan besiyerinde gözlenen hedef dışı mikroorganizma koloni sayısı 10 dan az Kalitatif metot Bu metot yalnızca görsel değerlendirmeye dayalıdır. Sıvı besiyerleri hedef mikroorganizmanın selektif olmayan sıvı besiyerindeki 18-24 saatlik kültürü ile 1 µl lik öze kullanılarak inoküle edilir. Test edilen besiyeri için metot ile tanımlanan sıcaklık ve sürede inkübasyon sonunda besiyerinin verimliliği tüplerdeki bulanıklık ile değerlendirilir. Bulanıklık gözlenmeyen tüpler 0 puan, zayıf bulanıklık gözlenen tüpler 1 puan ve iyi gelişme gözlenen tüpler 2 puan olarak değerlendirilir. Hedef mikroorganizma için kabul kriteri 2 puandır. Selektif besiyerlerinde hedef dışı mikroorganizma kısmen veya tamamen inhibe olmalıdır (0 veya 1 puan). 4

Tablo 1.3 Besiyerlerinde gözlenen problemler ve muhtemel nedenleri Problem Agarın katılaşmaması Hatalı ph Anormal renk Presipitasyon Düşük verimlilik, inhibisyon Düşük seçicilik Muhtemel neden Düşük ph nın asit hidrolizine neden olması Yanlış tartım Agarın tamamen çözülmemesi Bileşenelerin yetersiz karışması Kimyasal kontaminasyon ph nın yanlış sıcaklıkta ölçülmesi ph metrenin hatalı kalibrasyonu Hatalı ph Kontaminasyon ph kontrolünün yetersizliği Yanlış formülasyon (Ör., bileşenlerin doğru tartılmaması, katkıların yanlış konsantrasyonda ilavesi) Katkıların yanlış konsantrasyonda veya yanlış sıcaklıkta ilavesi 5