Avrupa Antimikrobik Duyarlılık Testleri Komitesi

Benzer belgeler
EUCAST tarafından önerilen rutin iç kalite kontrol Sürüm 3.1, geçerlilik tarihi

Avrupa Antimikrobik Duyarlılık Testleri Komitesi

Avrupa Antimikrobial Duyarlılık Testi Komitesi

KISITLI BİLDİRİM. ADTS grubunun hazırladığı Kısıtlı Bİldirim Tabloları ile ilgili olarak dikkat edilmesi gereken konular.

Ne değişti? Dr. Özlem Kurt-Azap

Hazırlayanlar: Doç. Dr. Yasemin ZER Mikrobiyoloji AD Öğrt. Üyesi

Değerlendirme kılavuzu

GRAM POZİTİF BAKTERİ ANTİBİYOGRAMLARI

Türk Mikrobiyoloji Cemiyeti-ADTS Grubunun hazırladığı "Kısıtlı Bİldirim Tabloları" ile ilgili olarak dikkat edilmesi gereken noktalar:

EUCAST Uzman Kuralları. Sürüm 3.1. Doğal Direnç ve Beklenmeyen Fenotip Tabloları

Kısıtlı Bildirim, Otomatize Sistemler, EUCAST. Güner Söyletir, Nilay Çöplü

Ae- MİKROBİYOLOJİ LABORATUVARI İÇ KALİTE KONTROL VE DÖF TALİMATI

De erlendirme. Antimikrobik duyarl k testine yönelik EUCAST disk difüzyon yöntemi. Sürüm 4.0 Haziran 2014

ADTS Grubunun Hazırladığı Kısıtlı Bİldirim Tabloları İle İlgili Olarak Dikkat Edilmesi Gereken Hususlar:

Antimikrobik duyarlılık testine yönelik EUCAST disk difüzyon yöntemi. Sürüm 3.0 Ocak 2014

Antibiyogram nasıl değerlendirilir?

ANTİMİKROBİYAL YÖNETİM VEKLİNİK MİKROBİYOLOĞUN GÖREVLERİ. Doç.Dr.Nilay ÇÖPLÜ

Sağlık Hizmetleri ile İlişkili İnfeksiyonlardan Soyutlanan Bakterilerin Antibiyotik Duyalılık Sonuçları

CLSI M100-S20 STANDARDINDAKİ DEĞİŞİKLİKLER. Ahmet Başustaoğlu Gülhane Askeri Tıp Akademisi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

KISITLI ANTİBİYOTİK DUYARLILIK TESTİ BİLDİRİMİ TALİMATI

EUCAST a Geçiş. Dr. Deniz Gür Ph.D. Hacettepe Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

Kullanılan Standartlar ve Farkları (CLSI, EUCAST)

Olgularla Antimikrobiyal Duyarlılık Testleri (Gram Negatif Bakteriler)

ULUSAL ANTİMİKROBİYAL DİRENÇ SÜRVEYANSI BAKTERİ TANIMLAMA VE ADT STANDART UYGULAMA PROSEDÜRLERİ

Antimikrobik duyarl k testine yönelik EUCAST disk difüzyon yöntemi

BD Mueller Hinton Fastidious Agar (MH-F)

Antimikrobik duyarl k testine yönelik EUCAST disk difüzyon yöntemi. Sürüm 5.0 Ocak 2015

ANTIMIKROBIYAL DUYARLıLıK TESTLERIVE. Doç.Dr.Nilay Çöplü

Enfeksiyon odaklarından izole edilen Gram negatif ve Gram pozitif bakterilerde antimikrobiyal duyarlılık sonuçları

REVİZYON DURUMU. Revizyon Tarihi Açıklama Revizyon No

Prof.Dr. Müzeyyen MAMAL TORUN. İ.Ü.Cerrahpaşa Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

Klinik Örneklerden İzole Edilen E.coli Suşlarının Kümülatif Antibiyotik Duyarlılıklarının Belirlenmesi

Olgularla Güncel Direnç Mekanizmaları;Saptama ve Raporlama. Dr Dilara Öğünç Akdeniz Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji AD

ULUSAL ANTİMİKROBİYAL DİRENÇ SÜRVEYANS SİSTEMİ. KALİTE KONTROLÜ ve KALİTE GÜVENCESİ STANDART UYGULAMA PROSEDÜRLERİ

Pnömonide Etkene Yönelik Antimikrobiyal Tedavi

Direnç Mekanizmalarının Saptanmasında EUCAST Önerileri

SİSTEMİK ANTİMİKROBİK VE DİĞER İLAÇLARIN REÇETELEME KURALLARI LİSTESİ

Dr Recep ÖZTÜRK.

CLSI DAN EUCAST A. Deniz Gür Zeynep Gülay Volkan Korten

Direnç Yorumlamada Uzmanlaşma - OLGULAR - Prof. Dr. Ufuk HASDEMİR Yrd. Doç. Dr. Onur KARATUNA

KÜLTÜR VE DUYARLILIK TESTLERİNİN KULLANIMI VE YORUMU. Feriha Çilli Hall Ege Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

KISITLI ANTİBİYOTİK BİLDİRİMİ

ANTİBİYOTİK DUYARLILIĞI VE DİRENÇLERİN YORUMLANMASINDA UZMAN SİSTEMLERİN ROLÜ

OLGU SUNUMLARI. Dr. Aslı Çakar

OLGULARLA GÜNCEL DİRENÇ MEKANİZMALARI; SAPTAMA VE RAPORLAMA. Dr.Pınar Çıragil

Gram negatif bakteriler. Zeynep Gülay

KISITLI ANTİBİYOTİK DUYARLILIK TESTİ PROSEDÜRÜ

Antibiyotik Direnci: Global Problem

Sepsisde Klinik, Tanı ve Tedavi

ANTİBİYOTİKLER. Antibiyotikler, bakterileri öldüren veya onların üremelerini durduran maddelerdir. Bakterileri öldüren antibiyotiklere bakterisidal,

ANTİBİYOGRAM YORUMLAMA KRİTERLERİ VE KISITLI BİLDİRİM KURALLARI

Sorunlu Mikroorganizmalar, Sorunlu Antibiyotikler ve E Test. Prof.Dr.Güner Söyletir Marmara Üniversitesi, İstanbul

Oya Coşkun, İlke Çelikkale, Yasemin Çakır, Bilgecan Özdemir, Kübra Köken, İdil Bahar Abdüllazizoğlu

EUCAST a Geçiş Sonrası Neler Değişti Kliniğe Yansımaları

ULUSAL ANTİMİKROBİYAL DİRENÇ SURVEYANS SİSTEMİ (UAMDSS) Doç.Dr.Nilay ÇÖPLÜ

Antimikrobiyal yönetim ve klinik mikrobiyoloğun görevleri. Doç.Dr.Nilay ÇÖPLÜ

ULUSAL ANTİMİKROBİYAL DİRENÇ SURVEYANS SİSTEMİ

Antibiyotik Duyarl l k Testlerinin Yorumu

BD Mueller Hinton II Agar BD Mueller Hinton II Agar 150 mm BD Mueller Hinton II Agar, Square

Antibiyotik Duyarlılık Testlerinde Sık Sorulan Sorular

OLGULARLA ANTİBİYOTİK DUYARLILIK TESTLERİ (GRAM NEGATİF BAKTERİLER) DR. ÇİĞDEM ARABACI OKMEYDANI E.A.H.

Campylobacter ve Aeromonas Türleri Prof. Dr. Betigül ÖNGEN

ULUSAL VE ULUSLARARASI ANTİMİKROBİYAL DİRENÇ SÜRVEYANS ÇALIŞMALARI

Klinik Uygulamada Antibiyotik Duyarlılık k Testleri ve Değerlendirilmesi. erlendirilmesi -Gram Negatif Bakteriler- Dr.

İnvaziv E.coli izolatlarında 3. kuşak sefalosporin direnç yüzdeleri, AB Ülkeleri ve Türkiye (2014)

Gereç ve yöntem. Şişli Hamidiye Etfal EAH- 700-yataklı. Yenidoğan yoğun bakım ünitesi -29 yataklı Bir izolasyon odası Üç farklı bölüm

«Olgularla sağlık hizmeti ile ilişkili enfeksiyonlarda duyarlılık testlerinin kullanımı ve tedavi yaklaşımları»

AMAÇ. o Sefoperazon-sulbaktam (SCP), o Ampisilin-sulbaktam (SAM), o Polimiksin-B (PB) o Rifampin (RİF)

Antibiyotik duyarlılık testlerinde standardizasyon. Prof.Dr. Ahmet Başustaoğlu

Antibiyogram Yorumu. Mik. Uz. Dr. fiüküfe Diren

Genişlemiş Spektrumlu Beta-Laktamaz Üreten Gram Negatif Kan İzolatları: Karbapenemlere Duyarlılık ve Fenotipik/Genotipik Direnç Mekanizmaları

Serolojik Test Sonuçları, Bakteri İdantifikasyonu,Antibakteriyel Duyarlılık Testleri Olgu Sunuları. Mik.Uzm.Dr.Uğur Çiftçi Düzen Laboratuvarlar Grubu

Olgular eşliğinde yeni tedavi rehberlerine bakış Hastanede gelişen pnömoni olgusu

NOZOKOMİYAL PATOJENLER ANTİMİKROBİYAL DİRENÇ


ANTİBAKTERİYEL DİRENÇ SÜRVEYANSI CEASAR VE UAMDS PROJELERİ

Yeni Antibiyotikler. Yrd Doç Dr. Nefise ÖZTOPRAK Zonguldak Karaelmas Üniversitesi Tıp Fakültesi İnfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji

Eklem Protez Enfeksiyonlarında Antimikrobiyal Tedavi

BBL Sensi-Disc Antimicrobial Susceptibility Test Discs

Akılcı İlaç Kullanımı

ESBL-Pozitif Enterobacteriaceae Olgusu ve Tedavi Seçenekleri. Dr. Oral ÖNCÜL İstanbul Tıp Fakültesi İnf. Hst. Kl. Mik.

TÜBERKÜLOZ DIŞI MİKOBAKTERİLER (TDM)

Antimikrobiyal Yönetiminde Tıbbi Mikrobiyoloji Uzmanının Rolü

Gram Pozitif Bakteriler ve Duyarlılık Testleri. Güner Söyletir

Gram Negatif Bakteriler. Fenotipik yöntemlerden direnç. aminoglikozidler. Dr. Devrim Dündar 22 Mart 2010, Aydın

Gram-Negatif Bakterilerde Direncin Laboratuvar Tanısı ve Yorumlanması

Antimikrobiyal Duyarlılık Testleri (AMD) Hangi Durumlarda Yapılmalı? Genel kavramlar

Fenotipik yöntemlerden direnç mekanizmasına. Antibiyotik direnç mekanizmasını bilmek neden önemli?

Yoğun Bakım Ünitesinde Yatan Hastalardan İzole edilen Etkenler ve Antibiyotik Direnç Paternleri

ANTİBİYOTİK DUYARLILIK TEST SİSTEMLERİNİN VERİFİKASYONU

ANKEM Derg 2011;25(Ek 1) KAN KÜLTÜRÜNDEN ÜREYEN MİKROORGANİZMALAR VE ANTİBİYOTİK DUYARLILIKLARI: ÜÇ YILLIK SONUÇLAR. Ayşe WILLKE, Emel AZAK

Gram Pozitif Bakterilerde Antibiyotik Direnci ve Tedavi Yaklaşımı

Antibiyotik Duyarlılık Testleri: Laboratuvardan Kliniğe. Özlem Kurt Azap, Zeynep Gülay, Sesin Kocagöz

OLGULARLA TOPLUM KÖKENLİ ENFEKSİYONLARDA DİRENÇ VE TEDAVİ YAKLAŞIMLARI

Yrd. Doç. Dr. Uluhan Sili Marmara Üniversitesi Pendik Eğitim ve Araştırma Hastanesi Enfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji AD

BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood (150 mm) BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep blood, Square

MİK Minimum İnhibisyon Konsantrasyonu. Mikroorganizmanın üremesinin engellendiği en düşük ilaç konsantrasyonudur.

Antimikrobiyal Direnç Testlerinin Yorumlanması. Prof. Dr. Ayşe Willke Topcu 7 Ekim 2016 İstanbul

Ulusal Antimikrobiyal Direnç Sürveyans Sistemi (UAMDSS)

Türkiye'de Antibiyotik Direncinin Durumu

Transkript:

Avrupa Antimikrobik Duyarlılık Testleri Komitesi belirlenmesi ve disk difüzyon için EUCAST tarafından önerilen rutin ve genişletilmiş iç kalite kontrol Sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Bu doküman kaynak gösterilirken aşağıdaki ifade kullanılmalıdır "The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST. Version 6.1, 016. http://www.eucast.org." Genel Sayfa Notlar 1 Değişiklikler Rutin kalite kontrol Sayfa Escherichia coli ATCC 59 4 Pseudomonas aeruginosa ATCC 7853 6 Staphylococcus aureus ATCC 913 7 Enterococcus faecalis ATCC 91 9 Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 10 Haemophilus influenzae ATCC 49766 1 Campylobacter jejuni ATCC 33560 13 β-laktam-β-laktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin inhibitör bileşeninin 14 kontrolü Disk difüzyon yöntemiyle direnç mekanizmalarının saptanması için Sayfa genişletilmiş kalite kontrol Enterobacteriaceae 'de GSBL üretimi 16 Staphylococcus aureus ' ta metisilin direnci 16 Enterokoklarda vanb 'ye bağlı glikopeptid direnci 16 Enterokoklarda yüksek-düzey aminoglikozid direnci 16 Haemophilus influenzae' de PBP mutasyonlarına bağlı β-laktam 17 antimikrobiklere azalmış duyarlılık

EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Notlar 1. EUCAST kalite kontrol (KK) tablolarında hem aralıklar hem de hedefler listelenmektedir. EUCAST kalite kontrol kökenleriyle tekrarlayan testlerde elde edilen ve zon çapı değerleri önerilen aralıkta rastgele dağılım göstermelidir. Eğer gerçekleştirilen test sayısı 10 ise mod değeri hedef değer ile aynı olmalı ve ortalama zon çapı hedef. ISO standart dokümanlarına erişim için bakınız http://www.eucast.org/documents/external_documents/. 3. Rutin KK için kullanılan EUCAST kalite kontrol kökenleri test performansının izlenmesi için kullanılmaktadır. Kontrol testleri en azından rutin panellerde yer alan antibiyotikler için günlük olarak yapılmalı ve kontrol edilmelidir. KK test sonuçlarının analizi için bakınız EUCAST Disk Difüzyon Testi El Kitabı, bölüm 9. 4. β-laktam-β-laktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin inhibitör bileşeninin kontrolü için özel β-laktamaz üreten kökenler önerilmektedir. Bu rutin KK çalışmalarının bir parçası olmalıdır. Aktif bileşen standart KK kökenleri ile kontrol edilir. 5. Genişletilmiş KK için önerilen EUCAST kalite kontrol kökenleri EUCAST rutin kalite kontrol kökenlerinin tamamlayıcısıdır. Bu kökenler özel direnç mekanizmalarının (GSBL, MRSA, VRE, YDGD ve PBP mutasyonları) saptanmasında önerilmektedir ve rutin duyarlılık testlerinin doğru S, I ve R sonuçlarını verdiğininin kontrolü için kullanılmaktadır. Genişletilmiş KK duyarlılık test sisteminde gerçekleşen herhangi bir değişiklikte (her yeni 1

EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Önceki sürümden değişiklikler Sürüm 6.1 01.03.016 ATCC 59 ATCC 7853 Direnç mekanizmalarının saptanması için KK kökenler Sürüm 6.0 01.01.016 Genel ATCC 59 ATCC 3518 ATCC 7853 ATCC 913 ATCC 91 Değişiklikler EUCAST KK tabloları sürüm 6.0'dan değişiklik gösteren veya ekleme yapılan hücreler mavi renkle belirtilmektedir. KK aralıkları güncellendi: Meropenem (zon çapı). CLSI ile işbirliği yapılarak aralık güncellendi. KK aralıkları güncellendi: Sefepim (zon çapı). CLSI ile işbirliği yapılarak aralık güncellendi. KK aralıkları eklendi: E. faecalis ATCC 5199 ile streptomisin. Değişiklikler EUCAST KK tabloları sürüm 5.0'dan değişiklik gösteren veya ekleme yapılan hücreler sarı renkle belirtilmektedir. Rutin ve genişletilmiş KK arasında daha açık ayırım. Genişletilmiş KK tabloları için yeni biçim. Zon çapı hedefleri tek bir hedef değeri olmayan aralıklar için ayrıntılandırıldı, örneğin aralık 19-6 ve hedef -3 mm (3 mm yerine). KK aralıkları eklendi: Seftobiprol (zon çapı) ve seftolozan-tazobaktam ( ve zon çapı). Yeni yorumlar: Yorum 9. Değişen yorumlar: Yorum 10. Tablo "İnhibitör kombinasyonu disklerinin inhibitör bileşeninin kontrolü"ne taşındı. KK aralıkları eklendi: Seftolozan-tazobaktam ( ve zon çapı). Yeni yorumlar: Yorumlar 5 ve 7. Değişen yorum: Yorum 6. KK aralıkları eklendi: Dalbavansin, oritavansin ve tedizolid (). Seftobiprol (zon çapı). Değişen yorumlar: Yorum 5-7. KK aralıkları eklendi: Streptomisin (zon çapı). Yeni yorumlar: Yorum 5-6. ATCC 49619 KK aralıkları eklendi: Dalbavansin, oritavansin ve tedizolid (). Değişen KK aralıkları: Seftarolin ve seftobiprol (zon çapı HA iken "-" olarak değiştirildi).trimetoprim-sülfametoksazol (zon çapı). Değişen yorumlar: Yorum 5-7. NCTC 8468 016'dan itibaren çıkartıldı. Rutin KK için H. influenzae ATCC 49766 önerilmektedir. ATCC 49766 KK aralıkları eklendi: Seftibuten, seftriakson, siprofloksasin, levofloksasin, moksifloksasin ve ofloksasin (zon çapı). Değişen KK aralıkları: Amoksisilin-klavulanik asit (zon çapı). Seftarolin (zon çapı HA iken "-" olarak değiştirildi). Yeni yorum: Yorum 4. İnhibitör kombinasyonu disklerinin inhibitör bileşeninin kontrolü Direnç mekanizmalarının saptanması için kalite kontrol kökenleri Yeni tablo. Kökenler eklendi: K. pneumoniae ATCC 700603 ve S. aureus ATCC 913. KK aralıkları eklendi: Seftolozan-tazobaktam ( ve zon çapı). Yeni biçim. KK aralıkları eklendi: E. faecalis ATCC 5199 ile streptomisin (hedef duyarlılığı).

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Rutin kalite kontrol 3

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Escherichia coli ATCC 59 (NCTC 141, CIP 76.4, DSM 1103, CCUG 1760, CECT 434) Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar, McFarland 0.5, normal atmosfer, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış siyah bir zemin üzerinde plağa tersinden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık 3 Amikasin 1-0.5-4 30-3 19-6 Amoksisilin 4-8 - - - Amoksisilin-klavulanik asit 4,5 4-8 0-10 1 18-4 6 Ampisilin 4-8 10 18-19 15-6 Ampisilin-sulbaktam 5,7 1-4 10-10 1-19-4 6 Aztreonam 0.15 0.06-0.5 30 3 8-36 Sefadroksil - - 30 17 14-0 Sefaleksin 8 4-16 30 18 15-1 Sefepim 0.03-0.06 0.016-0.15 30 34 31-37 Sefiksim 0.5 0.5-1 5 5 3-7 Sefotaksim 0.06 0.03-0.15 5 8 5-31 Sefoksitin 4-8 30 6 3-9 Sefpodoksim 0.5 0.5-1 10 5-6 3-8 Seftarolin 0.06 0.03-0.15 3 5 7 4-30 Seftazidim 0.15-0.5 0.06-0.5 10 6 3-9 Seftibuten 0.5 0.15-0.5 30 31 7-35 Seftobiprol 0.06 0.03-0.15 3 5 8 5-31 Seftolozan-tazobaktam 8,9 0.5 0.15-0.5 3 30-10 8 4-3 Seftriakson 0.06 0.03-0.15 30 3 9-35 Sefuroksim 4-8 30 3 0-6 Kloramfenikol 4-8 30 4 1-7 Siprofloksasin 0.008 0.004-0.016 5 35 30-40 Kolistin 0.5-1 0.5- - - - Doripenem 0.03 0.016-0.06 10 31 7-35 Ertapenem 0.008 0.004-0.016 10 3-33 9-36 Fosfomisin 10 1 0.5-3 - - - Gentamisin 0.5 0.5-1 10-3 19-6 İmipenem 0.15 0.06-0.5 10 9 6-3 Levofloksasin 0.016-0.03 0.008-0.06 5 33 9-37 Mesilinam 0.06-0.15 0.03-0.5 10 7 4-30 Meropenem 0.016-0.03 0.008-0.06 10 31-3 8-35 Moksifloksasin 0.016-0.03 0.008-0.06 5 31-3 8-35 Nalidiksik asit 1-4 30 5-8 Netilmisin - 0.5-1 10 1 18-4 Nitrofurantoin 8 4-16 100 0 17-3 Norfloksasin 0.06 0.03-0.15 10 31-3 8-35 Ofloksasin 0.03-0.06 0.016-0.15 5 31 9-33 Pefloksasin - - 5 9 6-3 Piperasilin 1-4 30 4 1-7 Piperasilin-tazobaktam 5,8 1-4 30-6 4 1-7 Tikarsilin 8 4-16 75 7 4-30 Tikarsilin-klavulanik asit 4,5 8 4-16 75-10 7 4-30 Tigesiklin 11 0.15 0.03-0.5 15 3-4 0-7 Tobramisin 0.5 0.5-1 10 18-6 Trimetoprim 1 0.5-5 4-5 1-8 Trimetoprim-sülfametoksazol 1 0.5-1.5-3.75 6 3-9 4

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Escherichia coli ATCC 59 (NCTC 141, CIP 76.4, DSM 1103, CCUG 1760, CECT 434) 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. Uluslararası Standartlar Organizasyonu, ISO 0776-1: 006'dan (en son CLSI M100 dokümanında yer alan güncellemelerle), istisna olarak koyu/italik yazılan aralık değerleri EUCAST tarafından belirlenmiştir. 3 Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, istisna olarak koyu/italik yazılan aralık değerleri EUCAST tarafından belirlenmiştir. Tüm aralıklar EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 4 testlerinde kullanılmak üzere klavulanik asidin konsantrasyonu mg/l olarak sabitlenmiştir. 5 E. coli ATCC 3518 (TEM-1 β-laktamaz-üreten köken) inhibitör bileşenin kontrolü için kullanılmaktadır (bakınız β-laktam-βlaktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin rutin kontrolü). 6 Bazı Mueller-Hinton agar serilerinde ince iç zon olarak görülebilen üreme ihmal edilmelidir. 7 testlerinde kullanılmak üzere sulbaktamın konsantrasyonu 4 mg/l olarak sabitlenmiştir. 8 testlerinde kullanılmak üzere tazobaktamın konsantrasyonu 4 mg/l olarak sabitlenmiştir. 9 İnhibitör bileşenin kontrolü için E. coli ATCC 3518 veya K. pneumoniae ATCC 700603 kullanılabilir (bakınız β-laktam-βlaktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin rutin kontrolü). 10 Fosfomisin değerleri (sıvı ve agar dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde 5 mg/l) glukoz-6-fosfat varlığında belirlenmelidir. Ticari sistemler için üreticinin talimatları takip edilmelidir. 11 Tigesiklin için sıvı mikrodilüsyon ile belirlenmesi testinde besiyeri kullanılacağı gün taze hazırlanmalıdır. 1 Trimetoprim-sülfametoksazol oranı 1:19. değerleri trimetoprim konsantrasyonu olarak ifade edilir. 5

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Pseudomonas aeruginosa ATCC 7853 (NCTC 1903, CIP 76.110, DSM 1117, CCUG 17619, CECT 108) Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar, McFarland 0.5, normal atmosfer, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış siyah bir zemin üzerinde plağa tersinden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık 3 Amikasin 1-4 30 18-6 Aztreonam 4-8 30 6 3-9 Sefepim 1-0.5-4 30 8 5-31 Seftazidim 1-4 10 4 1-7 Seftolozan-tazobaktam 4,5 0.5 0.5-1 3 30-10 8 5-31 Siprofloksasin 0.5 0.5-1 5 9 5-33 Kolistin 1-0.5-4 - - - Doripenem 0.5 0.15-0.5 10 31-3 8-35 Fosfomisin 6 4-8 3 - - - Gentamisin 1 0.5-10 0 17-3 İmipenem 1-4 10 4 0-8 Levofloksasin 1-0.5-4 5-3 19-6 Meropenem 0.5 0.5-1 10 30 7-33 Netilmisin 0.5-8 10 18 15-1 Piperasilin -4 1-8 - - - Piperasilin-tazobaktam 4,7-4 1-8 30-6 6 3-9 Tikarsilin 16 8-3 - - - Tikarsilin-klavulanik asit 7,8 16 8-3 75-10 4 0-8 Tobramisin 0.5 0.5-1 10 3 0-6 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. Uluslararası Standartlar Organizasyonu, ISO 0776-1: 006'dan (en son CLSI M100 dokümanında yer alan güncellemelerle). 3 Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, istisna olarak koyu/italik yazılan aralık değerleri EUCAST tarafından belirlenmiştir. Tüm aralıklar EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 4 testlerinde kullanılmak üzere tazobaktamın konsantrasyonu 4 mg/l olarak sabitlenmiştir. 5 İnhibitör bileşenin kontrolü için E. coli ATCC 3518 veya K. pneumoniae ATCC 700603 kullanılabilir (bakınız β-laktam-βlaktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin rutin kontrolü). 6 Fosfomisin değerleri (sıvı ve agar dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde 5 mg/l) glukoz-6-fosfat varlığında belirlenmelidir. Ticari sistemler için üreticinin talimatları takip edilmelidir. 7 E. coli ATCC 3518 (TEM-1 β-laktamaz-üreten köken) inhibitör bileşenin kontrolü için kullanılmaktadır (bakınız β-laktam-βlaktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin rutin kontrolü). 8 testlerinde kullanılmak üzere klavulanik asidin konsantrasyonu mg/l olarak sabitlenmiştir. 6

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Staphylococcus aureus ATCC 913 (NCTC 1973, CIP 10349, DSM 569, CCUG 15915, CECT 794) (zayıf) β-laktamaz üreten köken Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar, McFarland 0.5, normal atmosfer, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış siyah bir zemin üzerinde plağa tersinden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık 3 Amikasin 1-4 30 1 18-4 Ampisilin - - 18 15-1 Azitromisin 1 0.5- - - - Benzilpenisilin 0.5-1 0.5-1 ünite 15 1-18 Sefoksitin 1-4 30 7 4-30 Seftarolin 0.5 0.15-0.5 4 5 7 4-30 Seftobiprol 0.5-0.5 0.15-1 4 5 5-8 Kloramfenikol 4-8 -16 30 4 0-8 Siprofloksasin 0.5 0.15-0.5 5 4 1-7 Klaritromisin 0.5 0.15-0.5 - - - Klindamisin 0.15 0.06-0.5 6 3-9 Dalbavansin 5 0.06 0.03-0.15 4 - - - Daptomisin 6 0.5-0.5 0.15-1 - - - Doksisiklin 0.5 0.15-0.5 - - - Eritromisin 0.5 0.5-1 15 6 3-9 Fosfomisin 7 1-0.5-4 4 - - - Fusidik asit 0.15 0.06-0.5 10 9 6-3 Gentamisin 0.5-0.5 0.15-1 10 19-5 Levofloksasin 0.15-0.5 0.06-0.5 5 6 3-9 Linezolid 1-4 10 4 1-7 Minosiklin 0.15-0.5 0.06-0.5 30 6 3-9 Moksifloksasin 0.03-0.06 0.016-0.15 5 8 5-31 Mupirosin 0.15 0.06-0.5 00 34 31-37 Netilmisin 0.5-10 3 0-6 Nitrofurantoin 16 8-3 100 0 17-3 Norfloksasin 1 0.5-10 1 18-4 Ofloksasin 0.5-0.5 0.15-1 5 4 1-7 Oritavansin 5 0.03-0.06 0.016-0.15 4 - - - Kinupristin-dalfopristin 0.5 0.5-1 15 4 1-7 Rifampisin 0.008 0.004-0.016 5 33 30-36 Tedizolid 0.5 0.5-1 4 - - - Teikoplanin 0.5 0.5-1 - - - Telavansin 5 0.06 0.03-0.15 - - - Tetrasiklin 0.5-0.5 0.15-1 30 7 3-31 Tigesiklin 8 0.06-0.15 0.03-0.5 15 19-5 Tobramisin 0.5-0.5 0.15-1 10 3 0-6 Trimetoprim 1-4 5 5-8 Trimetoprim-sülfametoksazol 9 0.5-1.5-3.75 9 6-3 Vankomisin 1 0.5- - - - 7

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Staphylococcus aureus ATCC 913 (NCTC 1973, CIP 10349, DSM 569, CCUG 15915, CECT 794) (zayıf) β-laktamaz üreten köken 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. Uluslararası Standartlar Organizasyonu, ISO 0776-1: 006'dan (en son CLSI M100 dokümanında yer alan güncellemelerle). 3 EUCAST tarafından belirlenmiş ve geçerli kılınmıştır. 4 Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 5 belirlenmesi testi (sıvı dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde %0.00) polisorbat-80 varlığında gerçekleştirilmelidir (geçerli agar dilüsyon yöntemi henüz bulunmamaktadır). Ticari sistemler için üreticinin talimatlarına uyulmalıdır. 6 Daptomisin için belirlenmesi testi (sıvı dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde 50 mg/l) Ca + varlığında gerçekleştirilmelidir (geçerli agar dilüsyon yöntemi henüz bulunmamaktadır). Ticari sistemler için üreticinin talimatlarına uyulmalıdır. 7 Fosfomisin değerleri (sıvı ve agar dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde 5 mg/l) glukoz-6-fosfat varlığında belirlenmelidir. Ticari sistemler için üreticinin talimatları takip edilmelidir. 8 Tigesiklin için sıvı mikrodilüsyon ile belirlenmesi testinde besiyeri kullanılacağı gün taze hazırlanmalıdır. 9 Trimetoprim-sülfametoksazol oranı 1:19. değerleri trimetoprim konsantrasyonu olarak ifade edilir. 8

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Enterococcus faecalis ATCC 91 (NCTC 1697, CIP 10314, DSM 570, CCUG 9997, CECT 795) Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar, McFarland 0.5, normal atmosfer, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış siyah bir zemin üzerinde plağa tersinden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık 3 Ampisilin 1 0.5-18 15-1 Siprofloksasin 0.5-1 0.5-5 19-5 Gentamisin 8 4-16 30 4 15 1-18 İmipenem 1 0.5-10 7 4-30 Levofloksasin 0.5-1 0.5-5 19-5 Linezolid 1-4 10 19-5 Nitrofurantoin 8 4-16 100 1 18-4 Norfloksasin 4-8 10 19 16- Kinupristin-dalfopristin 4-8 15 14 11-17 Streptomisin Not 5 Not 5 300 6 17 14-0 8 Teikoplanin 0.5 0.5-1 30 18 15-1 Tigesiklin 7 0.06 0.03-0.15 15 3 0-6 Trimetoprim 0.5 0.15-0.5 8 5 8 4-3 Trimetoprim-sülfametoksazol 9 0.5-1.5-3.75 30 6-34 Vankomisin 1-4 5 13 10-16 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. Uluslararası Standartlar Organizasyonu, ISO 0776-1: 006'dan (en son CLSI M100 dokümanında yer alan güncellemelerle). 3 EUCAST tarafından belirlenmiş ve geçerli kılınmıştır. 4 Enterokoklarda yüksek-düzey aminoglikozid direnci için tarama diski. 5 E. faecalis ATCC 91 ve streptomisin 300 µg diski için henüz mevcut aralığı bulunmamaktadır. 6 Enterokoklarda yüksek-düzey streptomisin direnci için tarama diski. 7 Tigesiklin için sıvı mikrodilüsyon ile belirlenmesi testinde besiyeri kullanılacağı gün taze hazırlanmalıdır. 8 Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan. 9 Trimetoprim-sülfametoksazol oranı 1:19. değerleri trimetoprim konsantrasyonu olarak ifade edilir. 9

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Streptococcus pneumoniae ATCC 49619* (NCTC 1977, CIP 104340, DSM 11967, CCUG 33638) Azalmış benzilpenisilin duyarlılığına sahip köken * S. pneumoniae 'nin MH-F plaklarındaki zon sınırlarına sıklıkla α-hemoliz eşlik eder. Hemoliz zonu değil, üreme inhibisyon zonu değerlendirilmelidir. Hemoliz ve üremenin kolaylıkla ayırt edilebilmesi için plak eğilerek incelenmelidir. Genellikle tüm α- hemoliz alanı üzerinde üreme vardır ama bazı MH-F besiyerlerinde üzerinde üreme bulunmayan ek α-hemoliz alanı bulunmaktadır. Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar + %5 defibrine at kanı ve 0 mg/l β-nad (MH-F), McFarland 0.5, %5 CO, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış ve kapağı açık plağa ön yüzünden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık 3 Amoksisilin 0.06 0.03-0.15 - - - Ampisilin 0.15 0.06-0.5 8 5-31 Azitromisin 0.15 0.06-0.5 - - - Benzilpenisilin 0.5 0.5-1 1 ünite 19 16- Sefaklor 1-4 30 8 5-31 Sefepim 0.06-0.15 0.03-0.5 30 34 31-37 Sefotaksim 0.06 0.03-0.15 5 31 8-34 Sefpodoksim 0.06 0.03-0.15 10 3 9-35 Seftarolin 0.016 0.008-0.03 4 - - - Seftobiprol 0.016 0.004-0.03 4 - - - Seftriakson 0.06 0.03-0.15 30 35 3-38 Sefuroksim 0.5 0.5-1 30 31 8-34 Kloramfenikol 4-8 30 7 4-30 Siprofloksasin - - 5 5-8 Klaritromisin 0.06 0.03-0.15 - - - Klindamisin 0.06 0.03-0.15 5-8 Dalbavansin 5 0.016 0.008-0.03 4 - - - Daptomisin 6 0.15-0.5 0.06-0.5 - - - Doripenem 0.06 0.03-0.15 10 34 31-37 Doksisiklin 0.03-0.06 0.016-0.15 - - - Ertapenem 0.06-0.15 0.03-0.5 10 31 8-34 Eritromisin 0.06 0.03-0.15 15 9 6-3 İmipenem 0.06 0.03-0.15 10 38 34-4 Levofloksasin 1 0.5-5 4 1-7 Linezolid 0.5-1 0.5-10 6 3-9 Meropenem 0.15 0.06-0.5 10 34 30-38 Minosiklin - - 30 8 5-31 Moksifloksasin 0.15 0.06-0.5 5 7 4-30 Nitrofurantoin 8 4-16 100 8 5-31 Norfloksasin 4-8 10 1 18-4 Ofloksasin 1-4 5 1 18-4 Oritavansin 5 0.00 0.001-0.004 4 - - - Oksasilin 7 - - 1 11 8-14 7 Rifampisin 0.03 0.016-0.06 5 9 6-3 Tedizolid 0.5 0.15-0.5 4 - - - Teikoplanin - - 30 1 18-4 Telitromisin 0.008-0.016 0.004-0.03 15 30 7-33 Tetrasiklin 0.15-0.5 0.06-0.5 30 31 8-34 Tigesiklin 8 0.03-0.06 0.016-0.15 15 7 4-30 Trimetoprim-sülfametoksazol 9 0.5-0.5 0.15-1 1.5-3.75 18-6 Vankomisin 0.5 0.15-0.5 5 0 17-3 10

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Streptococcus pneumoniae ATCC 49619* (NCTC 1977, CIP 104340, DSM 11967, CCUG 33638) Azalmış benzilpenisilin duyarlılığına sahip köken 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. Uluslararası Standartlar Organizasyonu, ISO 0776-1: 006'dan (en son CLSI M100 dokümanında yer alan güncellemelerle). 3 EUCAST tarafından belirlenmiş ve geçerli kılınmıştır. 4 Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 5 belirlenmesi testi (sıvı dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde %0.00) polisorbat-80 varlığında gerçekleştirilmelidir (geçerli agar dilüsyon yöntemi henüz bulunmamaktadır). Ticari sistemler için üreticinin talimatlarına uyulmalıdır. 6 Daptomisin için belirlenmesi testi (sıvı dilüsyon yöntemlerinde besiyerinde 50 mg/l) Ca + varlığında gerçekleştirilmelidir (geçerli agar dilüsyon yöntemi henüz bulunmamaktadır). Ticari sistemler için üreticinin talimatlarına 7 S. aureus ATCC 913 (S. aureus disk difüzyon yöntemine göre) mm hedef ve 19-5 mm aralık değerleri ile oksasilin 1 µg diskinin kalite kontrolü için kullanılabilir. 8 Tigesiklin için sıvı mikrodilüsyon ile belirlenmesi testinde besiyeri kullanılacağı gün taze hazırlanmalıdır. 9 Trimetoprim-sülfametoksazol oranı 1:19. değerleri trimetoprim konsantrasyonu olarak ifade edilir. 11

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Haemophilus influenzae ATCC 49766 (NCTC 1975, CIP 103570, DSM 11970, CCUG 9539) Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar + %5 defibrine at kanı ve 0 mg/l β-nad (MH-F), McFarland 0.5, %5 CO, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış ve kapağı açık plağa ön yüzünden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef Aralık Amoksisilin-kavulanik asit 3,4 0.5 0.15-0.5-1 0 17-3 Amoksisilin 0.5 0.15-0.5 - - - Ampisilin 0.15 0.06-0.5 19-5 Ampisilin-sulbaktam 5 0.15 0.06-0.5 - - - Azitromisin 1 0.5- - - - Benzilpenisilin - - 1 ünite 18 15-1 Sefepim 0.06 0.03-0.15 30 33 30-36 Sefiksim 0.03 0.016-0.06 5 3 9-35 Sefotaksim 0.008 0.004-0.016 5 33 9-37 Sefpodoksim 0.06 0.03-0.15 10 33 30-36 Seftarolin 0.008 0.004-0.016 - - - Seftibuten 0.03 0.016-0.06 30 34 31-37 Seftriakson 0.004 0.00-0.008 30 38 34-4 Sefuroksim 0.5 0.5-1 6 30 30 6-34 Kloramfenikol 0.5 0.5-1 30 34 31-37 Siprofloksasin 0.008 0.004-0.016 5 36 3-40 Klaritromisin 8 4-16 - - - Doripenem 0.15 0.06-0.5 6 10 9 6-3 Doksisiklin 0.5 0.5-1 - - - Ertapenem 0.03 0.016-0.06 6 10 30 7-33 Eritromisin 4-8 15 13 10-16 İmipenem 0.5 0.5-1 6 10 7 4-30 Levofloksasin 0.016 0.008-0.03 5 35 31-39 Meropenem 0.06 0.03-0.15 6 10 31 7-35 Minosiklin 0.5 0.15-0.5 30 9 6-3 Moksifloksasin 0.016 0.008-0.03 5 33 30-36 Nalidiksik asit - - 30 30 7-33 Ofloksasin 0.03 0.016-0.06 5 34 31-37 Rifampisin 0.5 0.5-1 5 4 1-7 Roksitromisin 8 4-16 - - - Telitromisin 1-4 15 17 14-0 Tetrasiklin 0.5 0.5-1 30 31 8-34 Trimetoprim-sülfametoksazol 7 0.03 0.016-0.06 1.5-3.75 31 7-35 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. EUCAST tarafından belirlenmiş ve geçerli kılınmıştır. 3 testlerinde kullanılmak üzere klavulanik asidin konsantrasyonu mg/l olarak sabitlenmiştir. 4 S. aureus ATCC 913 (β-laktamaz üreten köken) inhibitör bileşenin kontrolü için kullanılmaktadır (bakınız β-laktam-βlaktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin rutin kontrolü). 5 testlerinde kullanılmak üzere sulbaktamın konsantrasyonu 4 mg/l olarak sabitlenmiştir. 6 Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 7 Trimetoprim-sülfametoksazol oranı 1:19. değerleri trimetoprim konsantrasyonu olarak ifade edilir. 1

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Campylobacter jejuni ATCC 33560 (NCTC 11351, CIP 70, DSM 4688, CCUG 1184) Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar + %5 defibrine at kanı ve 0 mg/l β-nad (MH-F), McFarland 0.5, mikroaerop ortam, 41±1ºC, 4 saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış ve kapağı açık plağa ön yüzünden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. MH-F plakları bakterinin yayılmasını azaltmak için inokülasyon öncesinde kurutulmalıdır (0-5 C'de gece boyunca veya 35 C'de plağın kapağı açık olarak 15 dakika). (µg) Hedef Aralık Hedef 1 Aralık Siprofloksasin HA HA 5 38 34-4 Eritromisin HA HA 15 31 7-35 Tetrasiklin HA HA 30 34 30-38 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. EUCAST tarafından belirlenmiş ve geçerli kılınmıştır. HA = Hazırlık Aşamasında 13

Rutin KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 β-laktam-β-laktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin rutin kontrolü Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar, McFarland 0.5, normal atmosfer, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış siyah bir zemin üzerinde plağa tersinden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Escherichia coli ATCC 3518 (NCTC 11954, CIP 10181, DSM 593, CCUG 30600, CECT 943) TEM-1 β-laktamaz üreten köken (GSBL dışı) β-laktam-β-laktamaz inhibitör kombinasyonu disklerinin inhibitör bileşenini kontrol etmek için kullanılır. Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık Amoksisilin-klavulanik asit 3 8-16 4-3 0-10 19-0 17-4 Ampisilin-sulbaktam 5 3-64 16-18 10-10 16 13-19 4 Seftolozan-tazobaktam 6,7 0.15 0.06-0.5 30-10 8 5-31 Piperasilin-tazobaktam 6 1 0.5-30-6 4 1-7 Tikarsilin-klavulanik asit 3 16 8-3 75-10 3 1-5 Klebsiella pneumoniae ATCC 700603 (NCTC 13368, CCUG 4541, CECT 7787) SHV-18 GSBL üreten köken Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık Seftolozan-tazobaktam 6,7 1 0.5-30-10 1 17-5 Staphylococcus aureus ATCC 913 (NCTC 1973, CIP 10349, DSM 569, CCUG 15915, CECT 794) (zayıf) β-laktamaz üreten köken Hedef 1 Aralık (µg) Hedef 1 Aralık Amoksisilin-klavulanik asit 3 Not 8 Not 8-1 19-5 1 EUCAST tarafından hesaplanmıştır. Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, istisna olarak koyu/italik yazılan aralık değerleri EUCAST tarafından belirlenmiştir. Tüm aralıklar EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 3 testlerinde kullanılmak üzere klavulanik asidin konsantrasyonu mg/l olarak sabitlenmiştir. 4 Bazı Mueller-Hinton agar serilerinde ince iç zon olarak görülebilen üreme ihmal edilmelidir. 5 testlerinde kullanılmak üzere sulbaktamın konsantrasyonu 4 mg/l olarak sabitlenmiştir. 6 testlerinde kullanılmak üzere tazobaktamın konsantrasyonu 4 mg/l olarak sabitlenmiştir. 7 İnhibitör bileşenin kontrolü için E. coli ATCC 3518 veya K. pneumoniae ATCC 700603 kullanılabilir. 8 E. coli ATCC 3518 inhibitör bileşenin kontrolü için kullanılmaktadır. 14

Genişletilmiş KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Disk difüzyon yöntemiyle direnç mekanizmalarının saptanması için genişletilmiş kalite kontrol 15

Genişletilmiş KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Mueller-Hinton agarda direnç mekanizmalarının disk difüzyon yöntemiyle saptanmasında kullanılacak kalite kontrol kökenleri Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar, McFarland 0.5, normal atmosfer, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış siyah bir zemin üzerinde plağa tersinden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Enterobacteriaceae 'de GSBL üretimi Klebsiella pneumoniae ATCC 700603 (NCTC 13368, CCUG 4541, CECT 7787) SHV-18 GSBL üreten köken (µg) Hedeflenen Aralık duyarlılık 1 Aztreonam 30 R 9-17 Sefotaksim 5 I veya R 1-18 Sefpodoksim 10 R 9-16 Seftazidim 10 I veya R 6-1 Seftriakson 30 I veya R 16- Yorumlar Staphylococcus aureus 'ta metisilin direnci Staphylococcus aureus NCTC 1493 (CCUG 67181) Metisiline dirençli (MRSA), meca pozitif (µg) Hedeflenen Aralık duyarlılık 1 Sefoksitin 30 R 14-0 Yorumlar Enterokoklarda vanb 'ye bağlı glikopeptid direnci Enterococcus faecalis ATCC 5199 (NCTC 13379, CIP 104676, DSM 1956, CCUG 3489) vanb pozitif köken (µg) Hedeflenen Aralık duyarlılık 1 Yorumlar Teikoplanin 30 S 16-0 Vankomisin 5 R 6-1 Zon sınırlarının belirlenmesi için plak arkadan gelen bir ışık ile (plak ışığa doğru tutularak) incelenmelidir. Belirsiz inhibisyon zon sınırları zon çapı duyarlılık sınır değerinden geniş olsa dahi dirençli olarak değerlendirilir. Enterokoklarda yüksek-düzey aminoglikozid direnci Enterococcus faecalis ATCC 5199 (NCTC 13379, CIP 104676, DSM 1956, CCUG 3489) Yüksek-düzey gentamisin ve streptomisin dirençli Vankomisine dirençli (VRE), vanb pozitif (µg) Hedeflenen Aralık duyarlılık 1 Gentamisin 30 R 6 Streptomisin 300 R 6 Yorumlar 1 Hedefler EUCAST klinik sınır değerleri ile uyumludur ve direnç mekanizmalarının doğru olarak saptanmalarını sağlayacak şekilde belirlenmişlerdir. EUCAST klinik sınır değerlerine göre değerlendirme: S=Duyarlı, I=Orta-duyarlı, R=Dirençli. Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü, M100-S6, 016'dan, istisna olarak koyu/italik yazılan aralık değerleri EUCAST tarafından belirlenmiştir. Tüm aralıklar EUCAST tarafından geçerli kılınmıştır. 16

Genişletilmiş KK EUCAST KK Tabloları sürüm 6.1, geçerlilik tarihi 01.03.016 Mueller-Hinton Fastidious (MH-F) agarda direnç mekanizmalarının disk difüzyon yöntemiyle saptanmasında kullanılacak kalite kontrol kökenleri Disk difüzyon yöntemi: Mueller-Hinton agar + %5 defibrine at kanı ve 0 mg/l β-nad (MH-F), McFarland 0.5, %5 CO, 35±1ºC, 18± saat. İnhibisyon zonu sınırı, yansıyan ışıkla aydınlatılmış ve kapağı açık plağa ön yüzünden bakıldığında üremenin bittiği nokta olarak kabul edilir. Haemophilus influenzae 'de PBP mutasyonlarına bağlı olarak β-laktamlara azalmış duyarlılık Haemophilus influenzae ATCC 4947 (NCTC 1699, CIP 104604, DSM 9999, CCUG 614) (µg) Hedeflenen Aralık duyarlılık 1 Ampisilin R 6-1 Benzilpenisilin 1 ünite R 6-9 Yorumlar İnhibisyon zon çapları besiyerindeki değişimlerden, inokülumdan ve inkübasyon koşullarından özellikle etkilenmektedir. Zon içerisinde küçük koloniler üreyen inhibisyon zonları 6 mm (zon yok) olarak değerlendirilimelidir. 1 Hedefler EUCAST klinik sınır değerleri ile uyumludur ve direnç mekanizmalarının doğru olarak saptanmalarını sağlayacak şekilde belirlenmişlerdir. EUCAST klinik sınır değerlerine göre değerlendirme: S=Duyarlı, I=Orta-duyarlı, R=Dirençli. Tekrarlayan testler sonucunda EUCAST tarafından belirlenmiş ve geçerli kılınmıştır. 17