Final Sınavı Soruları

Benzer belgeler
Soru 1: DNA miktarını saptamak için spektrofotometrik yöntemin arkasındaki prensibi açıklayınız:

POLİMERAZ ZİNCİR REAKSİYONU (PZR-PCR) VE RESTRİKSİYON PARÇA UZUNLUĞU POLİMORFİZMİ (RFLP)

RTA JEL / PZR Saflaştırma Kiti

Hücre Biyoloji Laboratuarı Güz dönemi Alıştırma Soruları (Dr.Selcen Çelik)

Ökaryotik Hücre Kültürü

NÜKLEİK ASİTLERİN ELEKTROFOREZİ

Agaroz jel elektroforezi

RTA Bakteriden Genomik DNA İzolasyon Kiti

YAZILI SINAV SORU ÖRNEKLERİ BİYOLOJİ

REAKSİYON PRENSİPLERİ

SODYUM DODESİL SÜLFAT POLİAKRİLAMİD JEL ELEKTROFOREZİ İLE PROTEİNLERİN ANALİZİ

HÜCRE DONDURMA VE ÇÖZME. Uzm. Mol. Bio. Gamze ÇAĞATAY

Kromozom, DNA ve Gen. Allel Segregasyonu. DNA çift sarmalı. Hastalık yapan mutasyonlar protein fonksiyonunu bozar. Hastalık yapan mutasyonlar

Protokolü PD S Reaksiyon

KAPİLLER ELEKTROFOREZ DNA SEKANSLAMA

Listeria Monocytogenes Real time PCR Tespit Kiti

2. Histon olmayan kromozomal proteinler

Protokolü PD S Reaksiyon

REKOMBİNANT DNA TEKNOLOJİSİ. Araş. Gör. Dr. Öğünç MERAL

Rahim ağzı kanseri hücreleri doku kültürü mikroskopik görüntüsü.

MOLEKÜLER BİYOLOJİ LABORATUVARI

Replikasyon, Transkripsiyon ve Translasyon. Yrd. Doç. Dr. Osman İBİŞ

PCR Bir reaksiyonun kurulması ve optimize edilmesi

1. Ekstraksiyon Tamponu: %2 (w/v) CTAB (Cetyltrimethyl-ammonium bromide) 1.4 M NaCl, % 0.2 (v/v) β-merkaptoetanol, 20 mm EDTA. 100 mm Tris-HCl (ph 8)

Hücre içinde bilginin akışı

Laboratuvar Tekniği. Adnan Menderes Üniversitesi Tarımsal Biyoteknoloji Bölümü TBY 118 Muavviz Ayvaz (Yrd. Doç. Dr.) 5. Hafta (14.03.

MERKEZ LABORATUVAR. Moleküler Biyoloji Deneylerinde Sıklıkla Kullanılan Bazı Aletlerin Tanıtımı

BAKTERİLERİN GENETİK KARAKTERLERİ

MOLEKÜLER BİYOLOJİDE KULLANILAN YÖNTEMLER II. ( WESTERN BLOTTING (WESTERN EMDİRİMİ) ve İMMÜNODETEKSİYON

Genetik Yöntemlerle Bakterilere Gen Transferleri. (Cüneyt Akdeniz)

RTA Plazmid DNA İzolasyon Kiti

RTA Mayadan Genomik DNA İzolasyon Kiti

ATIKSULARDA FENOLLERİN ANALİZ YÖNTEMİ

MAIA Pesticide MultiTest

BRCA 1/2 DNA Analiz Paneli

SDS-PAGE Jel Elektroforezi İÇERİK

RT-PCR. (reverse transckripsiyon-polimeraz zincir reaksiyonu) Dr Gülnur Güler

BİYOLOJİ DERS NOTLARI YGS-LGS YÖNETİCİ MOLEKÜLLER

Lizis tamponu (50mL) : NaC 0,15M, EDTA 5mM, Tris-HCL 50mM, Np40 %1, Proteaz inhibitör kokteyli-1 tablet (Roche 50mL için ETDA free)

Gıda Örneklerinde Genetiği Değiştirilmiş Organizma Analizleri. Bölüm 9. MON810 Mısır, Bt-176 Mısır ve Roundup Ready Soya nın PCR ile Nitel Saptanması

PROTEİN. Mısırdan. İzolasyon Kiti. Öğretmen Kılavuzu. Öğrenci Kılavuzu

Agarose ve Akrilamid Jellerde Nükleik asitlerin Gözlenmesi

Elektoforez ENSTRÜMENTAL ANALİZ 10/12/2015. Elektroforez

ayxmaz/biyoloji 2. DNA aşağıdaki sonuçlardan hangisi ile üretilir Kalıp DNA yukarıdaki ana DNAdan yeni DNA molekülleri hangi sonulca üretilir A B C D

RTA Kandan Genomik DNA İzolasyon Kiti

ARB BOYAMA NASIL YAPILIR

Mustafa EMREM

Bakteriler Arası Genetik Madde Aktarımı

MOLEKÜLER BİYOLOJİ LABORATUVARI güz dönemi 2. HAFTA GAZİ ÜNİVERSİTESİ FEN FAKÜLTESİ BİYOLOJİ BÖLÜMÜ

2. HAFTA MİKROSKOPLAR

Moleküler Patoloji Doktora Programı 2013 Bahar Dönemi Ders Programı:

Genom analizi için belirteç olarak kullanılan DNA dizileri

Artan bilgi ile birlikte hasta ve ailelerin bilinçlendirilmesi

Western Blot (veya immünblot), protein ekspresyonunu doğrulamak için standart laboratuvar

DİCLE ÜNİVERSİTESİ TIP FAKÜLTESİ DÖNEM I HÜCRE BİLİMLERİ 2 KOMİTESİ HÜCRE KÜLTÜRÜ ve TEKNOLOJİSİ Doç.Dr. Engin DEVECİ

KONU: MOLEKÜLER BİYOLOJİDE TEMEL TEKNİKLER; Çözeltiler ve Tamponlar

ENTEGRE YÖNETİM SİSTEMİ TALİMATLAR

DÖNEM I TIBBA GİRİŞ DERS KURULU (01 EKİM Kasım 2018)

GIDA MÜHENDİSLİĞİ BÖLÜMÜ DOKTORA DERS KATALOĞU

Mitokondrial DNA Analiz Paneli

DNA Replikasyonu. Doç. Dr. Hilal Özdağ. A.Ü Biyoteknoloji Enstitüsü Merkez Laboratuvarı Tel: /202 Eposta:

RTA Dokudan ve Parafine-Gömülü Dokudan Genomik DNA İzolasyon Kiti

KAYE ve Spektrokimyasal seri

III-Hayatın Oluşturan Kimyasal Birimler

Hücre Neden DNA sını Replike Eder? ÇÜNKİ Mitoz Bölünmenin Gerçekleşmesi İçin S Evresinde DNA nın 2 Katına Çıkması Gerekmektedir

HÜCRENİN YAŞAM DÖNGÜSÜ

NÜKLEİK ASİTLER. Nükleotitler, nükleik asitlerin yapı taşlarıdır. Nükleotitlerin, hücre

18.Eyl Rektörlük Programı Eğitim Köyü Pazartesi Rektörlük Programı Eğitim Köyü Rektörlük Programı Eğitim Köyü

RNA Yapısı ve Katlanması, Hücrede Bulunan RNA Çeşitleri

GENETİK I BİY 301 DERS 6

POYRAZ TIBBİ CİHAZLAR EDVOTEK

ADIM ADIM YGS-LYS 37. ADIM HÜCRE 14- ÇEKİRDEK

SABUN SENTEZİ (Yağların Hidrolizi veya Sabunlaştırılması)

I. YARIYIL MOLEKÜLER HÜCRE BİYOLOJİSİ I (TBG 601, ZORUNLU, TEORİK 3, 3 KREDİ)

hendisliği BYM613 Genetik MühendisliM Tanımlar: Gen, genom DNA ve yapısı, Nükleik asitler Genetik şifre DNA replikasyonu

KATI ATIK ÖRNEKLERİNDE TOPLAM FOSFOR ANALİZ YÖNTEMİ

Rekombinant DNA teknolojisi ve genomik

Kistik Fibrozis DNA Analiz Paneli

MİKROBİYOLOJİ LABORATUARINDA SIK KULLANILAN BAZI BESİYERLERİNİN HAZIRLANMASI VE MUHAFAZASI

Hücrede Genetik Bilgi Akışı

FISH ve in situ melezleme

Petrifilm Maya ve Küf Sayım Plakalarında maya ve küf kolonilerini birbirinden ayırmak için aşağıda belirtilen genel özelliklere dikkat edin: MAYA

DNA dan Kromozomlara

Bakteri Hücrelerinde Bölünme

DNA JEL ELEKTROFOREZİ. Mikrobiyoloji Anabilim Dalı

Hücre Üzerine Mikrocerrahi Uygulamaları Hücrenin altbirimlerine ayrılması Moleküllerin analizi. Prof. Dr. Müjgan Cengiz

7. PROKARYOTLARDA GEN İFADESİNİN DÜZENLENMESİ

KJELDAHL AZOTU TAYİNİ ANALİZ TALİMATI

İLK ANYONLAR , PO 4. Cl -, SO 4 , CO 3 , NO 3

7. PROKARYOTLARDA GEN İFADESİNİN DÜZENLENMESİ

MEMBRANA AKTARIMLA PROTEİN SAPTANMASI: WESTERN EMDİRİMİ ( BLOTTİNG )

DNA Đzolasyonu. Alkaline-SDS Plasmit Minipreleri. Miniprep ler bakteri kültüründen plasmit DNA sı izole etmenizi sağlar.

1. Öğretmen Kılavuzu. 2. Öğrenci Kılavuzu

TRANSLASYON VE DÜZENLENMESİ

Canlıların yapısına en fazla oranda katılan organik molekül çeşididir. Deri, saç, tırnak, boynuz gibi oluşumların temel maddesi proteinlerdir.

Hücre Apoptozu. Apoptoz: Programlı Hücre Ölümü

MOLEKÜLER BİYOLOJİ DOÇ. DR. MEHMET KARACA (5. BÖLÜM)

NÜKLEİK ASİTLERİN SAKLAMA KOŞULLARI

NÖTRALĠZASYON TĠTRASYONLARI

Analiz Süresi: C'de 48 saat

Transkript:

Final Sınavı Soruları Soru1: PCR döngüsünü kısaca anlatılınız. Cevap1: İlk adımda solüsyonun sıcaklığı artırılarak DNA zincirinin denatüre olması sağlanır. Bu sırada Bundan sonra primerlerin tekli DNA zincirlerine bağlanması için sıcaklık düşürülür. Primerlerin bağlanmasından sonra sıcaklık polimerizasyonun gerçekleşmesi için uygun bir sıcaklığa getirilir: Primerler uzatılır ve primerlerin arasında kalan bölge sentezlenir. Sarmallar tekrar denature edilir, yeni primerler bağlanır ve DNA sentezi tekrar tekrar gerçekleşir; Bu işlem genelde 20 ila 50 döngü arasında tekrarlanır. Soru2: Proteomiks nedir, açıklayınız. Cevap2: Belirli bir genom tarafından ifade edilen proteinleri bütünsel ve birbiriyle etkileşimlerini dahil ederek inceleyen araştırma alanıdır. Bu alan, protein düzeyinde, gen ifadesi örüntüleri protein ve genom ilişkileri, protein-protein etkileşimlerini, protein modifikasyonlarını vs. incelemektedir. Soru 3: DNA microarray tekniğinin çalışmasını açıklayınız Cevap3: Mikroarray binlerce mikroskobik DNA oligonükleotit noktalarına sahiptir. Her bir nokta,features, prob denilen özel bir DNA sekansının pikomollerini içerir.prob-hedef hibritleşmesi genelde hedefteki nükleik asitlerin miktarını belirlemek için florofor etiketli hedeflerin belirlenmesiyle ölçülür ve saptanır. Bir array binlerce prob içerebildiğinden dolayı, bir mikroarray deneyi pek çok genetik testlerin sonucunu verebilir.

Soru4: Agaroz Jel Hazırlanması ( 1% w/v) Prosedürünü yazınız. Cevap4: 0.4 gr agaroz tartılır ve 40 ml 1X lik TAE tampon çözeltisinde dökülür Hazırlanan karışım ısıtılır. Jel in biraz soğuması beklendikten sonra (50-60 ºC) ve taraklar kalıba yerleştirildikten sonra kalıba dökülür. Nükleik asit örnekleri, 6X yükleme tamponu ile karıştırılır (örnek: tampon çözelti, 1:5), örneklerle birlikte, nükleik asit uzunluk referans cetveli (ladder), jele yüklenir Hazırlanmış olan jel elektroforez tankına aktarılır, ve jeli kapatacak şekilde, 1X lik TAE tampon çözeltisi eklenir 90 Voltluk bir akımla 1 saat çalıştırılır Soru5: Gram-pozitif bakterilerde transformasyon süreci aşamalarını belirtiniz. Cevap5: 1. Kompetans faktör adı verilen küçük bir proteinin salgılanması ile kompetans geliştirilmesi 2. Çift zincirli DNA nın bakteriye bağlanması 3. Tek zincirli DNA nın hücreye alınması 4. Tek zincirli DNA nın nükleaz degradasyonundan korunması için özel proteinlerle sarılması (eklips kompleks oluşumu) 5. Rekombinasyonla DNA zincirinin alıcı kromozoma entegrasyonu 6. Entegre olmuş DNA parçasının replikasyonu ve yeni fenotipin diğer nesillere aktarılması

Soru6: Hücrelerin Dondurulması ve Saklanması Prosedürünü yazınız. Cevap6: 1. Hücreler her zaman büyütüldükleri ortam ve serumda logaritmik faza kadar büyütülür. 2. Canlı hücre sayımı yapılır. Dondurulacak hücrelerin %20 sinden fazlasının ölü olmamasına dikkat edilir. 3. Ne kadar hücreye ve ampüle ihtiyaç duyulacağına karar verilir. Her ampül, 1ml ortam içinde 1 x 10 7 (ya da 4 X 10 6 ile 2 X 10 7 hücre arası ) hücre alabilir. 4. Dondurma ortamı her tüpte 1ml artı %10 olacak şekilde hazırlanır. Dondurma ortamı genelde normal kültür ortamı, %10-20 serum ve %5-10 gliserol ve DMSO içerir. Eğer hangi dondurma ortamı kullanılacağına karar verilemiyorsa hücreler %20 serum ve %10 DMSO da dondurulabilir. 5. Pelet, dondurma ortamında pipetaj yapılarak çözülür. 6. Hücreler, her ampüle 1ml düşecek şekilde ampüllere dağıtılır ve buzda tutulur. 7. Ampüller buzlukta saklanacak bir kutuya yerleştirilir ve -60 C veya daha düşük bir sıcaklıktaki dondurucuda 16 ile 24 saat arası bekletilir. 8. Bir buz kovasına bir miktar sıvı azot dökülür ve tüpler, sıvı nitrojen tankına aktarılmadan önce burada tutlur. 9. Tüpler yerleştirildikten sonra nereye koyuldukları kaydedilir.

Soru7: Kontaminasyonu Nasıl Tanırız? Cevap7: Makroskopik olarak: Kültür şişesini veya kabını ışığa tutularak şunlara dikkat edilerek incelenir: Bulanıklık. Kültür yoğun olsa bile, ortamın rengi bulanık değil, net bir şekilde görünmelidir. Ortamdaki bulanıklık ve kısım kısım hareket eden renk tonu farklılıkları dikkatle incelenmelidir. Bazı mantarlar ortamda yüzen koloniler oluşturabilirler. Ortamdaki renk değikliği. Fenol kırmızısının etkisiyle kırmızı renkli olan kültür, asidik koşullarda sarıya, bazik koşullarda ise mora döner. Bakteriyel kontaminasyon ortamı sarıya, mantar kontaminasyonu ise pembeye dönüştürür. Koku. Şişenin kapağı açılmadan burun şişeye yaklaştırılır. Birçok kontaminasyonun fark edilebilir bir kokusu vardır. Mikroskopik olarak: Kültür şişesi öncelikle 10X mikroskopta şunlara dikkat edilerek incelenir: Diğer organizmalar. Düşük büyütme gücünde, mantar miselleri uzun zincirler olarak gözlenir. Bu büyütmede mayalar da küçük toplar halinde, bazen de tomurcuklu bir şekilde görülebilirler. Yüksek büyütme gücünde bakteriler gözlenebilir. Bakteriler çubuk, kok, tek veya zincirlenmiş öbekler halinde olabilirler. Zarar görmüş hücreler. Enfeksiyon, hücreleri öldürebilir. Her hücrenin parçalanmasına ve/veya hücre tabakasının yüzeyde kalkmasına sebep olabilir. Çoğu zaman hücreler normalde olduklarından daha garip görünürler. Daha küçük veya daha büyük ya da koyu renk granüllü olabilirler.

Soru8: Sığır Serum Albümin (Bovine serum albumin BSA) Tamponunun Hazırlanmasını özetleyiniz. Cevap8: 1) 5 mg BSA küçük bir kapta tartılır. 2) 1000µl fosfat çözeltisi (ph=7.4) eklenip karıştırılır. 3) Kap BSA stok tamponu olarak işaretlenir. 4) Örneğin absorbansı UV spektrometre ile ölçülür. Ölçülen absorbans çok yüksek olacağından bu solüsyon seyreltilecektir. 5) Stok çözeltiden 200 µl BSA alınır. 6) Üzerine 800 µl fosfat çözeltisi eklenir. (200 µl BSA + 800 µl fosfat çözeltisi). Bu şekilde BSA seyreltilmiş olacaktır. Soru9: Spektral Analiz kaç basamağa ayrılır, her basamağı özetleyiniz. Cevap9: Elde edilen spektrumlar üzerinde uygulanacak olan spektral analiz iki basamağa ayrılabilir. İlk basamakta bant genişliği, sinyal şiddeti ya da bant alanı ve bant frekans değerlerinin belirlenmesini içeren kantitatif analiz yer alır. Bu analizde original ham data kullanılır. İkinci basamakta yer alan kalitatif analiz ise spektrumların gösterimi için gerçekleştirilmektedir. Bu analizin temelini yapılan normalizasyon oluşturmaktadır.

Soru10: Transmisyon Elektron Mikroskobu (TEM) ve Taramalı (scanning) Elektron Mikroskobu (SEM) 'nun kullanım ve avantajlarını belirtiniz. Cevap10: TEM: Kullanım: Hücre içindeki yapıları detaylı incelenmesini sağlar Avantajları: Yüksek çözünürlük. Konumlama çalışmaları için immünolojik işaretleme yöntemi ile birleştirilerek kullanılması mümkündür SEM: Kullanım: Hücre dışındaki bileşenleri ayrıntılı olarak incelememizi sağlar Avantajları: Yüksek çözünürlük. (Çözünürlük TEM e göre daha düşüktür)