Kök Hücre Kayna ve Seçimi

Transkript

1 Ali ÜNAL, smail SARI Erciyes Üniversitesi T p Fakültesi, ç Hastal klar, Hematoloji Bilim Dal G R fi Kemik li i (K ) kaynakl hematopoetik kök hücreler, Hem allojenik hem de otolog transplantasyonda en önemli hücre kayna olarak kabul edilmifl ve son y llara kadar transplantasyonlarda öncelikle kullan lm flt r. sayede daha fazla say da PKKH toplanmas ile otolog transplantasyon sonras h zl bir flekilde K yap lanmas mümkün hale gelmifltir. Ayr ca, posttransplant bak mdaki geliflmeler ve PKKH kullan - m, transplant iliflkili toksisite ve mortalitenin azalmas n sa lam flt r. PKKH lerin kemik ili ine karfl di er bir avantaj da transplantasyon iflleminin daha kolay hale gelmesini sa layan büyük miktarlarda hücrenin toplanmas, ar t lmas ve hücrelerin belirli k s mlar n n ço alt labilmesidir. Sonuç olarak OPKKHT, OK T nun yerini alm flt r. Otolog kemik ili i transplantasyonu ise ilk ve en büyük seri olarak 1978 de Appelbaum ve ark. taraf ndan yay nlanm flt r (1). Bu tarihten itibaren Otolog Kemik li i Transplantasyonu (OK T) özellikle relaps lenfoma tedavisinde artarak kullan lmaya bafllanm flt r. Bununla birlikte, otolog ilik graft ndaki düflük hematopoetik kapasite ve posttransplant sitopeninin uzamas nedeniyle araflt rmac lar, alternatif kök hücre kaynaklar aramaya yönelmifltir. Kemoterapi ile mobilize edilen periferik kan kök hücreleri (PKKH) nin hematopoezi yeniden oluflturma yetene i 1980 lerde gösterilmifltir. Ancak bu ifllemin otolog K hücrelerine k yasla engrafman süresi aç s ndan belirgin bir avantaja sahip olmad görülmüfltür. Fakat, hematopoetik büyüme faktörlerinin kullan lmaya bafllanmas ve bu Otolog transplantasyondaki baflar l sonuçlar görüldükten sonra, PKKH, allojenik transplantasyonda da kullan lmaya bafllanm flt r. PKKH içeri inin kemik ili ine göre yaklafl k on kat daha fazla T- lenfosit içeriyor olmas, graft versus host hastal - n n (GVHH) fliddeti ve insidans n art raca n düflündürmüfl, ancak yap lan araflt rmalarda akut 37

2 ÜNAL A., SARI. Kök Hücre Kayna ve Seçimi GVHH oluflmas üzerinde Kemik ili inden yap lan nakillere göre anlaml bir farkl l k olmad gösterilmifltir. Bununla birlikte kronik GVHH insidans n n artabilece i kanaatiyle PKKH kullan m, özellikle akraba olmayan transplantasyon alan nda, iyi planlanm fl çal flmalarla s n rland r lm flt r. gerçeklefltirilmektedir (2-4). Allojenik transplantasyonda, donör ve al c aras ndaki uyumsuzluk artt kça Graft-versus-Host hastal (GVHH) gibi ciddi yan etkilerin ortaya ç kt bilinmektedir. T hücre say s n azaltma giriflimleri ise GVHH fliddetini ve s kl n azaltmakla birlikte, engrafman yetersizli- ine neden olabilmektedir (5,6). Di er bir güncel hematopoetik kök hücre kayna da, kesin olarak istenilen hücre say s efli ine ulaflabilmeyi sa layan ve uzun dönem engrafman sa lama yetene ine sahip olan kordon kan d r. Sonuç olarak, otolog nakillerde kök hücre kayna olarak K ve PKKH, Allojenik nakillerde ise K, PKKH ve kordon kan kullan labilmektedir. Alternatif kaynaklar olan sitokinlerle stimüle edilerek ço alt lan K veya otolog kordon kan günümüzde henüz yayg n olarak kullan lmamaktad r. Otolog ve kordon kan nakillerinde, kök hücrenin yeniden geri verilmesi ifllemi (reinfüzyon) öncesinde yüksek doz kemoterapi uygulanabilmesi için, toplanan kök hücrelerin mutlak kriyoprezervasyon =dondurma ifllemine al nmas gerekmektedir. Kan ve kemik ili i progenitör hücre toplanmas, ifllenmesi, ve transplantasyon uygulamalar nda belirli standartlar konmufl ve bu standartlar Birleflik Akreditasyon Komitesi (Joint Accreditation Committee of ISHAGE-Europe) ve EBMT taraf ndan yay nlanm flt r. KÖK HÜCRE KAYNAKLARI Kemik li i Kemik ili i, heterojen yap da hematopoetik hücre grubundan oluflur. Bunlar n bir k sm n progenitor (kök) hücreler oluflturmaktad r. Standart olarak, kök hücre transplantasyonu, herhangi bir iflleme tabi tutulmam fl -di er hücrelerle kar fl k halde bulunan- kemik ili i hücrelerinin verilmesi ile Baflar l kemik ili i nakli için yeterli say da hücrenin elde edilmesi ve büyük miktarlarda (6 x108 mononükleer hücre (MNH)/kg) hücre verilmesi gerekmektedir (9). Relaps oran n azaltmak için, lösemik veya di- er mali n hücrelerden ar nd rma (purging) yöntemleri uygulanmaktad r. Purging ifllemi, pozitif seleksiyon (CD34 seçimi) veya negatif seleksiyon (tümör hücresinin ar nd r lmas ) gibi farkl metodlarla yap labilir. Non-Hodgkin lenfomada (NHL) B- hücrelere karfl kullan lan anti-cd 20 antikoru ile invivo ve invitro ar nd rma yap labilmektedir (7-8). Periferik Kan Periferik kan kök hücre transplantasyonunda, yeterli say da hücre elde etmek daha kolay oldu u gibi graft yetersizli i ve relaps oran daha düflüktür. CD34+ hematopoetik kök hücreler, kemoterapi ve/veya büyüme faktörü ile mobilize edilen periferik kandan toplanabilir. Mobilize edilmeyen periferik kan çok az miktarda (yaklafl k % 0.15) CD34+ mono nükleer hücre (MNH) içerir. Fakat, k sa süreli kemoterapi veya kemoterapi + büyüme faktörü kombinasyonu ya da tek bafl na büyüme faktörü verilerek CD34+ hücrelerin yüzdesi art r labilir (10-14). PKKH mobilizasyonu, kemik ili i ve periferik kandaki ço alma yetene ine sahip progenitör hücrelerin varl na ba l d r. Periferik kandaki MNH lerin (PBMNC) az bir k sm n kök hücreler oluflturmaktad r. Hem mobilize CD34+ hücreler, hem de CFU-GM içeren MNH ler, lökoferez ile toplanabilir 38

3 ÜNAL A., SARI. (17-18). PKKH, al c ya nakledilmeden önce yeterli say y elde etmek in vitro ço altma sistemleri de kullan - labilir, ancak etkinli i ve bu flekilde yap lan transplantasyonlar n baflar s halen tart flmal d r. Periferik kan kullan m n n bir avantaj da; özellikle lenfoma ve solid tümörlerde ve remisyondaki lösemik hastalarda, kemik ili ine göre daha az oranda mali n hücre içermesidir (15, 16). Kordon Kan Eriflkin kemik ili inin aksine, göbek kordon kan ndan al nan saflaflt r lm fl progenitör hücreler, büyüme faktörü verilmese bile klonojenik maturasyona u rarlar. Broxmeyer ve ark. ve di er baz araflt rmac lar n yapt klar çal flmalarda, hem term hem de preterm göbek kordon kan n n eriflkin periferik kan ile karfl laflt r ld nda anlaml olarak daha fazla say da progenitör hücre içerdi i gösterilmifltir (19). CFU-GM say s ve CFU-GM ço alma h z, kordon kan nda anlaml olarak daha yüksektir. Yine, "Koloni Oluflturan Ünit - Granulosit, Eritroid, Monosit, Megakaryosit" (CFU-GEMM) in say s n n ve CFU-GEMM ço alma h z n n eriflkin periferik kan ile karfl laflt r ld nda, kordon kan nda daha yüksek oldu u gözlenmifltir (20-27). lk kordon kan transplantasyonu, 1988 y l nda Fanconi Anemili bir hastaya yap lm flt r. Yeterli hematopoetik kök hücreye sahip kordon kan toplanarak, HLA uyumlu kordon kan ndan hastaya transplant yap lm fl ve kür elde edilmifltir. Bu olgu sonras nda kordon kan toplama, kordon kan bankac l ve transplantasyon say s h zla artm flt r. Donörlerin ço u HLA uyumlu olmakla birlikte 1, 2 veya 3 HLA antijeni farkl donörlerle dahi baflar l transplantlar bildirilmifltir. Kordon kan bankalar n n tüm dünyada h zl ca yay lmas yla HLA uygun veya k smi uygun donörlerden 1000 in üzerinde baflar l transplantasyon gerçeklefltirilmifltir. Kordon kan transplantasyon say s n n artmas, allojenik transplantasyon için büyük kordon kan bankalar n n kurulmas na ve bunun sonucunda akraba iliflkili olmayan transplantasyon say s n n artmas na neden olmufltur. Bu durum, kordon kan toplama, iflleme ve depolama ifllemlerine belirli bir standardizasyon getirilmesi gereklili ini de ortaya ç karm flt r (28). Bafllang çal flmalar ndan ç kan ilk sonuçlar, kordon kan transplantasyonunun kemik ili i transplantasyonuna iyi bir alternatif oldu unu göstermifltir. Çocuklarda malign ve malign olmayan hastal klardaki sonuçlar oldukça iyidir. Vakalar n %80 inde engrafman gözlenmifltir. Ortalama recovery süresi nötrofiller (PMN) için 22 gün, trombositler için 48 gündür. Engrafman h z, verilen A: progenitör hücre B: engrafman h z fiekil: Kordon kan ve eriflkin periferik kanda bulunan progenitör hücre say s (A) ve engrafman h z n n (B) karfl laflt r lmas. 39

4 ÜNAL A., SARI. Kök Hücre Kayna ve Seçimi hücre say s ile iliflkilidir. En az 3x10 7 mononükleer hücre/kg alan hastalardaki nötrofil ve trombosit engrafman, bu say dan daha az hücre alan hastalara göre daha iyidir. Bu nedenle, toplanan hücre say s n n 1x10 7 /kg veya CD34 + hücre say s n n 2X10 5 den az oldu u durumlarda kordon kan kullan lmamal d r. HLA uyumlu kordon kan transplantasyonu yap lan hastalarda GVHH oran daha azd r. GVHH oran ve fliddetinin az olmas ; donör ve al c n n genç yaflta olmas na, donör hücreleri daha önceden infeksiyöz ajanlarla karfl laflmad için bu hücrelerin immunizasyon ve aktivasyonunun olmamas na, kordon kan ndaki lenfosit say s n n az olmas na, kontamine anne hücrelerinin immunsupresif etkisine ve do umda immunolojik fonksiyonlar n immatür olmas na ba lanmaktad r. Akraba iliflkili olmayan veya HLA uygun olmayan akrabalardan yap lan kordon kan transplantasyonunda, akut GVHH insidans ve fliddetinin az oldu u gözlenmifltir. Bununla birlikte net sonuçlar n ortaya ç kmas için daha fazla karfl laflt rmal çal flmalara ihtiyaç vard r. Fetal Karaci er Fetüs geliflimi s ras nda, karaci er fizyolojik olarak hematopoetik dokunun bir parças d r. Gebeli in ikinci ay ndan yedinci ay na kadar olan süre içerisinde ve ideal olarak lenfopoezin bafllang - c ndan önce fetal karaci er transplantasyon için kullan labilir. Konjenital immün yetmezli i olan çoçuklarda görüldü ü gibi fetal karaci er hem lenfopoetik hem de hematopoetik sistemin yeniden yap land r lmas nda oldukça baflar l d r (29-30). Mezenkimal Kök Hücre Kemik ili i stromas n n yeniden yap land r lmas ve dolafl ma kök hücrelerin sal nmas n sa layan "Mezenkimal kök hücre" olarak adland r lan bir progenitör hücre grubunun varl bilinmektedir (31). Mezenkimal kök hücreler ayn zamanda kondrosit, osteoblast ve myeloblast gibi di er Mezenkimal organ sistemlerinin prekürsör hücreleridir (32). Kemik ili i kaynakl Mezenkimal kök hücreler kullan larak gerçeklefltirilen ilk klinik çal flmalar osteogenesis imperfekta tan s alm fl çoçuklar n tedavisi için yap lm flt r. Ayr ca kalp kas hücresi ve endotel gibi özelleflmifl doku üretiminde de Mezenkimal kök hücrelerden yararlan lmaktad r. KAYNAKLAR 1. Appelbaum FR, Herzig GP, Ziegler JL, Graw RG, Levine AS, Deisseroth AB. Succesful engraftment of cryopreserved autologous bone marrow in patients with malignant lymphoma. Blood 1978; 52: Thomas ED, Storb R. Technique for human marrow grafting. Blood 1970; 36: Thomas ED, Storb R, Clift RA et al. Bone marrow transplantation. N Eng J Med 1975; 292: Deeg HJ, Klingemann HG, Philips GL. A guide to bone marrow transplantation. Berlin, New York: Springer Verlag, Kernan NA, Flomenberg N, Dupont B et al. Graft rejection in recipients of T-cell-depleted HLA nonidentical marrow transplants for leukemia. Transplantation 1987; 43: Sandell L, Johnson G, Przepiorka D et al. Phenotype and function of T-cells associated with marrow graft failure and rejection. In: Martelli MF, Grignani F, Reisner Y, eds. T-Cell Depletion in Allogeneic Bone Marrow Transplantation. Sereno Symposia Review No. 13, New York: Raven Press, 1988; Anderson KC, Barut BA, Ritz J et al. Monoclonal antibody-purged autologous bone marrow transplantation therapy for multiple myeloma. Blood 1991; 77: Foon KA, Tood RF III. Immunologic classification of leukemia and lymphoma. Blood 1986; 68: Areman EM, Deeg HJ, Sacher RA. Bone Marrow and Stem Cell Processing: A Manual of Current Techniques. Philedelphia: F.A. Davis & Co., Bender JG, Unverzagt K, Walker DE et al. Phenotypic analysis and characterization of CD34+ cells from normal human bone marrow, cord blood, peripheral blood, and mobilized peripheral blood from patients undergoing autologous stem cell transplantation. Clin Immunol Immunopathol 1994; 70: Juttner CA, To LB, Haylock DN et al. Circulating autologous stem cellscollected in very early remission from acute non-lymphoblastic leukemia produce prompt but incomplete hematopoietic reconstitution after high dose melphelan or supralethal chemoradiotherapy. Br J Haematol 1985; 61: Lopez M, Mortel O, Pouillart P et al. Infusion of autologous peripheral blood nucleated cells hastens hematological recovery after high dose chemotherapy and autologous transplantation of bone marrow. Bone Marrow Transplant 1990; 5: Campos L, Bastion Y, Roubi N et al. Peripheral blood stem cells harvested after chemotherapy and GM- CSF for treatment intensification in patients with advanced lymphoproliferative diseases. Leukemia 1993; 7: Siena S, Bregni M, Brando B et al. Circulation of CD34+ hematopoietic stem cells in the peripheral blood of high-dose cyclophosphamide treated patients: enhancement by intravenous recombinant human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor. Blood 1989; 74: Körbling M, Burke P, Braine H et al. Succesful engraftment of blood derived normal hematopoietic stem cells in chronic myelogenous leukemia. Exp Hematol 1981; 9:

5 ÜNAL A., SARI. 16. Sharp JG, Armitage J, Crouse D et al. Are occult tumor cells present in peripheral stem cell harvests of candidates for autologous transplantation? In: Dicke KA, Spitzer G, Jagannath S et al., eds. Autologous Bone Marrow Transplantation: Proceedings of the Fourth International Symposium, 1989; McNiece JK, Stewart FM, Deacon DM et al. Detection of a human CFC with a high proliferative potential. Blood 1989; 74: Russell NH, Hunter A, Rogers S et al. Peripheral blood stem cells as an alternative to marrow for allogeneic transplantation. Lancet 1993; 341: Broxmeyer HE, Gluckman E, Auerbach AD, Douglas GW, Friedman H, Cooper S, Hangoc G, Kurtzberg J, Bard J, Boyse EA. Human Umblical cord blood: A clinically useful source of transplantable hematopoietic stem/progenitor cells. Int J Cell Cloning1980; 8: Emerson SG, Sieff CA, Wang EA, Wong GG, Clark SC, Nathan DG. Purification of fetal hematopoietic progenitors and demonstration of recombinant multipotential colony-stimulating activity. 21. Haneline LS, Marshall KP, Clapp DW. The highest concentration of primitive hematopoietic progenitor cells in cord blood is found in extremely premature infants. Pediatr Res 1996, 39: Christensen RD, Harper TE, Rothstein G. Granulocyte-macrophage progenitor cells in term and preterm neonates. 23. Olson T, Levine R, Mazur E, Wright D, Salvado A. Megakaryocytes and megakaryocyte progenitors in human cord blood. Am J Pediatr Hematol Oncol 1992; 14: Deutsch VR, Olson TA, Nagler A, Slavin S, Levine RF, Eldor A. The response of cord blood megakaryocyte progenitors to IL-3, IL-6 and aplastic canine serum varies with gestational age. Br J Hematol 1995; 89: Broxmeyer H, Douglas G, Hangoc G, Cooper S, Bard J, English D, Amy M, Thomas L, Boyse E. Human Umblical cord blood: A clinically useful source of transplantable hematopoietic stem/progenitor cells. Proc Natl Acad Sci USA 1989; 86: Broxmeyer H, Hangoc G, Cooper S, Ribeiro R, Graves V, Yoder M, Wagner J, Vadhan-Raj S, Benninger L, Rubinstein P, Broun E. Growth characteristics and expansion of human umblical cord blood and estimation of its potential for transplantation in adults. Proc Natl Acad Sci USA 1992; 89: Christensen R. Circulating hematopoietic progenitor cells in neonates. J Pediatr 1987; 110: Rubinstein P, Rosenfield RE, Adamson JW, Stevens CE. Stored placental blood for unrelated bone marrow reconstitution. Blood 1993; 81: O2Reilly RJ, Pollack MS, Kapoor N et al. Fetal liver transplantation in man and animals. In: Gale RP, ed. Recent advances in Bone Marrow transplantation. New York: Alan R. Liss, 1983; Touraine JL. Transplantation of both fetal liver and thymus in severe combined immunodeficiencies: interaction between donor s and recipient s cells. In: Lucarelli G, Fliedner TM, Gale RP, eds. Fetal Liver Transplantation. Amsterdam: Excerpta Medica, 1980; Sandmaier BM, Storb R, Kinley J et al. Evidence of allogeneic stromal engrafment in the bone marrow using canine mesenchymal stem cells. Blood 1998; 92: 116a. 32. Pittinger MF, Mackay AM, Beck SC et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science 1999; 284: